The Journal of
the Korean Society on Water Environment

The Journal of
the Korean Society on Water Environment

Bimonthly
  • ISSN : 2289-0971 (Print)
  • ISSN : 2289-098X (Online)
  • KCI Accredited Journal

Editorial Office


  1. 울산과학기술원 지구환경도시건설공학과 (Department of Urban and Environmental Engineering, Ulsan National Institute of Science and Technology)
  2. 부산대학교 사회환경시스템공학과 (Department of Civil and Environmental Engineering, Pusan National University)
  3. 국립부경대학교 지구환경시스템과학부(환경공학전공) (Division of Earth Enironmental System Science (Major of Enviornmental Engineering), Pukyong National University)
  4. 울산과학기술원 탄소중립대학원 (Graduate School of Carbon Neutrality, Ulsan National Institute of Science and Technology)



Anaerobic ammonium oxidation, Bacterial community structure, Iron particle integrated anammox granule, Nitrogen removal

1. Introduction

하⋅폐수에 포함된 NH4+, NO2-, NO3-는 수생 생물에 독성을 일으켜 생존 및 번식 능력에 손상을 주고 인간에게도 해를 끼칠 수 있다(Camargo and Alonso, 2006; Liu et al., 2023; Yu et al., 2019). 전통적인 생물학적 질소 처리 공정으로는 질산화-탈질 공정이 주로 활용되며(Hu et al., 2023; Ilieva et al., 2024), 해당 공정은 높은 처리 효율을 나타내지만 질산화 공정에서의 높은 폭기 에너지 소모, 탈질 과정에서 외부 유기 탄소원의 투입 필요성, 그리고 N2O와 같은 온실가스가 발생하는 문제가 있다(Winkler and Straka, 2019). 또한 [유기성 폐자원을 활용한 바이오가스의 생산 및 이용 촉진법] 발효에 의해 2050년까지 유기성 폐자원의 80%를 바이오가스로 전환할 계획이 수립되어 있으며, 이에 따라 혐기 소화 설비 증설이 예상된다(ME, 2024). 이러한 배경에서, 혐기 소화 상징수에 포함된 고농도 질소의 효율적 처리를 위한 고도화된 질소 제거 기술이 요구되고 있다. 이에 따라, 비용 효율적이고 환경 친화적인 질소 제거 기술로 주목받는 anaerobic ammonium oxidation (anammox) 공정에 대한 연구개발이 활발히 진행되고 있다.

Anammox 미생물은 독립영양균으로 아질산염을 전자 수용체로 사용해 NH4+를 N2로 전환하는 과정(Equation 1)을 수행한다. 이를 통해 질산화-탈질 공정과 비교했을 때 경제성이 높고, N2O 발생량이 적으며, 탈질 공정에 필요한 탄소원 사용을 줄여 에너지 회수 효율을 향상시킬 수 있다는 장점을 가진다(Ali and Okabe, 2015; Kartal et al., 2013; Van De Graaf et al., 1995). Anammox 미생물은 Planctomycetota phylum에 속하며, 현재까지 Ca. Kuenenia, Ca. Brocadia, Ca. Jettenia, Ca. Scalindua, Ca. Anammoxoglobus, Ca. AnammoximicrombiumCa. Loosdrechtia 7종의 anammox 속이 보고되었다(Naufal and Wu, 2024; Yang et al., 2022). 또한, anammox 미생물 군집에 대한 정보는 공정 효율성을 높이기 위한 운영 전략 수립에 중요한 자료로 작용한다.

(1)
1   N H 4   +   +   1 . 32   N O 2   -   +   0 . 066   H C O 3   -   +   0 . 13   H +   - > 1 . 02   N 2   +   0 . 26   N O 3   -   +   0 . 066   C H 2 O 0 . 5 N 0 . 15   +   2 . 03   H 2 O

미생물의 군집구조는 환경 조건에 따라 적응 전략이 상이한 것으로 알려져 있다. 대부분의 anammox 미생물은 하수 처리 시스템에서 발견되지만 Ca. Scalindua 속의 경우 해양 환경에서 우점하는 경향을 보인다(Pereira et al., 2017). 선행 연구에 따르면 염도에 대한 anammox 미생물의 내성은 Ca. Scalindua가 10%로 가장 높았으며, Ca. Kuenenia는 6%, Ca. JetteniaCa. Brocadia는 0.25–1.5%의 유사한 내성을 보이는 것으로 보고되었다(Okabe et al., 2024).

Anammox 미생물의 일반적인 배가시간은 15–30 d로 보고되어 있다(Strous et al., 1998; Wett, 2007). 그러나 Ca. Brocadia anammoxidans 11 d, Ca. Kuenenia stuttgartiensis 8.3–11 d, Ca. Brocadia sinica 7 d, Ca. Brocadia sp. 40의 경우 2.1 d로, 일반적인 배가시간보다 더 짧은 배가시간을 가진다(Lotti et al., 2015; Oshiki et al., 2011; Strous et al., 1998; Van Der Star, Miclea et al., 2008). 반면, Ca. Jettenia moscovienalis는 28 d, Ca. Anammoxomicrobium moscowii는 32 d로 비교적 긴 배가시간을 가진다(Khramenkov et al., 2013; Nikolaev et al., 2015).

Trinh et al. (2022)의 연구에 따르면, 낮은 질소 부하율(nitrogen loading rate, NLR) 환경에서 Ca. Jettenia가 느린 배가시간에도 불구하고 Ca. Brocadia보다 우점하였다. 이는 Ca. Jettenia가 암모니아와 아질산염에 대해 높은 친화력을 가지기 때문이라고 보고되었다. 또한 Zhang and Okabe (2020)의 연구에 따르면 미생물 활성이 나타나는 최소 기질 농도(Smin)값이 Ca. Jettenia에서 Ca. Brocadia 보다 낮아 Ca. Brocadia가 활성을 유지하기 위해 더 많은 에너지를 필요로 한다. 이러한 특성으로 인해 낮은 NLR 환경에서는 Ca. JetteniaCa. Brocadia보다 우점할 가능성이 제시되었다. 이처럼 anammox 미생물은 종간에 다른 특성을 보이며, 이에 따라 공정 내 우점하는 anammox의 군집이 달라질 수 있다.

Anammox 미생물은 세포 외 고분자물질(extracellular polymeric substances, EPS)을 활발히 분비하며, 이를 통해 그래뉼을 형성하는 능력이 뛰어나다(Ni et al., 2015; Wang, Li et al., 2022). 스톡스 법칙에 따르면, 그래뉼 형성으로 인해 크기와 밀도가 증가함에 따라 침강 속도가 크게 향상된다(Chen et al., 2016; Su et al., 2013). 이러한 특성은 anammox 그래뉼(anammox granules, AGs)의 높은 바이오매스 농도를 유지하여 공정 운영을 촉진하고 질소 제거 성능을 향상시키는데 기여한다(Chen, Jiang et al., 2021; Kang et al., 2019). 그러나 AGs의 실질적인 문제는 anammox 미생물에 의해 생성된 N2 가스가 그래뉼 내에 압축되어 갇히는 현상이다(Chen et al., 2010; Yoda and Nishimura, 1997). AGs가 N2 가스로 채워질 경우, 부력이 증가하면서 침강 능력을 상실하고 반응기 표면으로 떠올라 미생물 유실을 초래할 수 있다(Dapena‐Mora et al., 2004; Trigo et al., 2006).

이를 해결하기 위해 부유 그래뉼을 분쇄한 후 황화철을 첨가하여 AGs의 침전율을 향상시키는 공정이 제안되었다(Yoda and Nishimura, 1997). Fe2+ 및 Fe3+는 전기적 중화를 통해 제타 전위를 감소시켜 anammox 슬러지의 그래뉼화를 촉진한다(Li et al., 2019; Xiao et al., 2017). 또한, 자철석, 황화철, 0가 철(zero valent iron, ZVI) 및 기타 철 기반 입자는 미생물 부착의 핵으로 작용하여 그래뉼화를 촉진하고 반응기의 안정성과 충격 부하에 대한 내성을 강화하며 바이오매스 침전 성능을 개선할 수 있다(Dai et al., 2023; Gao et al., 2014; Wang, Fan et al., 2022). 그러나 철 입자의 함입은 철 입자의 부식, 독성으로 인한 미생물 활성 저해, 세포막의 손상과 같은 문제를 유발할 수 있다(Fang et al., 2007; Xie et al., 2017). 이러한 부식 문제를 해결하기 위해 magnetite와 maghemite를 사용할 수 있지만, 경제성이 낮다는 한계가 있다(Sui et al., 2024). 그럼에도 불구하고, anammox 공정에서 철 입자의 함입은 침전성 향상과 질소 제거 성능 향상에 있어 중요한 이점을 제공한다. 특히, anammox 미생물의 heme C는 전자 전달, 유전자 조절, 효소 합성 등 다양한 대사 과정에 필수적이며, anammoxosome에 저장된 철 이온을 이용해 합성된다(Kartal, Maalcke et al., 2011; Wang, Li et al., 2022). 따라서 적절한 양의 Fe2+ 및 Fe3+를 첨가하면 heme C 합성과 효소 활성이 촉진되어 질소 제거 성능이 향상될 수 있다(Qiao et al., 2013; Shu et al., 2016). 또한, ZVI는 용존산소를 소비하여 혐기성 조건을 형성하고(Adams et al., 2020), anammox 공정의 산화환원 반응과 전자전달 과정에 관여하여(Ferousi et al., 2017; Liu et al., 2021) 공정 성능을 향상시키는 것으로 보고되었다.

이전 연구에서는 iron particle-integrated anammox granules (IP-IAGs)을 개발하여 AGs의 침전성과 생물학적 활성을 향상시켜 질소 제거 성능을 향상시켰다(Park et al., 2024). 본 연구는 철 입자 함입이 anammox 공정의 미생물 군집구조에 미치는 영향을 분석하고, 철 입자 함입 공정 운영 시 우점하는 미생물에 대한 통찰을 제공하고자 하였다. 미생물 군집 특성을 파악하기 위해 AGs, IP-IAGs, real wastewater partial nitritation (RW-PN), real wastewater iron particle-integrated anammox granules (RW-IAGs)의 16s rRNA gene을 차세대 시퀀싱 기법을 활용하여 분석하였다. 이를 통해 anammox 균주 특성을 정리하고, 각 균주 활용 방안에 대한 통찰력을 제공한다. 또한, anammox 군집의 자생 미생물에 대한 고찰을 통해 미생물 간 상호작용을 심층적으로 이해하고자 하였다. 추가적으로, anammox 공정에서 특정 종의 정량적 분석은 공정 활성 평가를 위한 중요한 지표가 될 수 있다. 이에 본 연구는 anammox 미생물 정량에 가장 적합한 primer에 대한 정보를 제공함으로써, anammox 기반 연구와 공정 운영을 최적화하는 데 유용한 도구를 제공한다.

2. Materials and Methods

2.1 바이오매스 배양과 그래뉼 농축

본 연구에서 사용된 anammox 슬러지는 대구광역시 서부 하수처리장에 위치한 파일럿 규모 반응기로부터 접종되었다. 해당 반응기는 sidestream 하수를 처리하기 위해 부분 아질산화조 및 anammox조로 구성된 two-stage 공정으로 운영되었다. 채집된 anammox 슬러지는 가로 17 cm, 세로 100 cm, 총 부피 22 L의 실험실 규모 상향류식 expanded granular sludge bed reactor (EGSB)에 접종되었다. 반응기는 아크릴로 제작되었으며, 완전히 밀봉되어 혐기성 조건을 유지하였다. 유입수는 반응기 하부에서 주입되었으며, 유출수는 EGSB의 상단에서 배출되었다. 교반속도는 그래뉼의 파손을 방지하고 생성된 N2 가스를 그래뉼에서 원활히 제거할 수 있도록 14 rpm으로 설정하였다. 침전 선택압으로 인해 밀도가 높고 부피가 큰 AGs는 EGSB 내부에 유지된 반면, 저밀도의 부유 anammox 슬러지는 유실되었다. 본 실험의 반응기는 continuous stirred-tank reactor (CSTR)로 구성되었으며, anammox 미생물 배양에 최적인 37 °C로 설정되었다. 반응기에 유입된 합성 폐수의 조성은 NH4Cl; 40–308 mg-NH4+-N/L, NaNO2; 54-337 mg-NO2--N/L, NaHCO3; 95 mg-HCO3--C/L, KH2PO4; 6 mg-PO4--P/L, MgSO4⋅7H2O; 12 mg-Mg2+/L, CaCl2⋅2H2O; 48 mg-Ca2+/L, Trace Ⅰ, Trace Ⅱ는 각각 1 mL/L씩 투여되었다. Trace의 조성은 Park et al. (2024)의 연구를 참고하였다. 또한, EGSB 반응기에 접종된 anammox 미생물 초기 volatile suspended solid (VSS) 농도는 5,600 mg/L이었다.

2.2 IP-IAGs 제작 조건 최적화

AGs의 침전성을 개선하기 위해 철 입자를 첨가한 IP-IAGs와 기존 AGs의 비교실험을 진행하였다. Chen, Zhang et al. (2021)의 연구에 따르면, 20 μm 이하 크기의 magnetite는 anammox 미생물과 높은 결합력을 가지는 것으로 보고되었으며, Zhang, Wang et al. (2022)은 43 μm 크기의 ZVI와 anammox 미생물을 결합한 공정에 대한 연구를 진행하였다. 이러한 선행 연구를 바탕으로, 본 연구에서는 53 μm 체를 통해 53 μm 이하 크기의 철 입자(Hands Korea, Republic of Korea)를 선별하였다. 철 입자의 결정구조를 파악하기 위해 magnetite와 철 입자에 대해 X-선 회절 분석법(X-ray diffraction, XRD)을 실시하였으며, 분석 결과는 Fig. 1에 제시하였다. XRD 분석 결과, 철 입자가 높은 비중을 가지고 있어 그래뉼의 밀도를 효과적으로 증가시킬 수 있음을 확인하였으며, 이에 따라 철 입자가 사용되었다. 철 입자 함입 결과, IP-IAGs는 평균 직경이 AGs보다 7.41% 작았음에도 불구하고 침전성이 17.91% 개선되었음을 확인했다(Park et al., 2024). 이후, 철 입자의 광물 조성을 분석하기 위해 주사 전자 현미경-에너지 분산형 X-선 분광법(Scanning Electron Microscope-Energy Dispersive X-ray Spectroscopy, SEM-EDS)을 수행했다. SEM-EDS 분석 결과, 철 입자의 조성은 Fe 59.9wt%, O 22.5wt%, C 13.9wt%, Si 3.1wt%, Ca 0.6wt%으로 조성된 것으로 확인되었으며, Park et al. (2024)의 연구에서 최적화된 철 입자 투여량을 바탕으로 AGs 1mg 당 0.75 mg의 철입자가 투여되었다.

Fig. 1. Analysis with XRD (a) iron particles (b) magnetite.
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EGSB에서 균질한 혼합은 미생물 유실을 유발하여 질소 제거 성능에 부정적인 영향을 미칠 수 있다. 이를 해결하기 위해 본 연구에서는 반응기 내부에 아크릴판을 설치하여 미생물 침전을 위한 별도의 공간을 설계하였다. 본 연구에서 사용된 반응기는 4 L의 혼합구역과 1 L의 침전 구역으로 구성되어 총 유효 부피는 5 L로 설계되었다. 침전 구역에는 밑면으로부터 60°로 기울어진 경사판이 설치되었으며, 폐수는 혼합구역 상부에서 유입되어 침전 구역의 28.5 cm 높이 상부에서 배출되도록 설계되었다. 교반은 상부에 설치된 임펠러를 통해 50 rpm으로 이루어졌으며, 반응기 온도는 열선과 자동 온도 조절기(MTOPS, TC130P, Republic of Korea)를 사용하여 37 °C로 유지하였다.

반응기는 두 가지 단계로 나누어 39 d 동안 운영되었으며, 이 기간 동안 NLR을 점진적으로 증가시켰다. 반응기에서 배양된 AGs 및 IP-IAGs의 초기 VSS 농도는 3,133 mg/L이며, 유입된 합성 폐수는 NH4+와 NO2-의 몰비를 1:1.32로 유지하였다. 반응기 운영은 Phase 1과 Phase 2로 진행되었으며 Phase 1 (1–30 d) 동안 수리학적 체류시간(hydraulic retention time, HRT)은 24 h으로 일정하게 유지되었고, 총질소(total nitrogen, TN) 농도는 95 mg-N/L에서 464 mg-N/L로 점진적으로 증가시키며 유입수의 pH는 7.6–8.1의 범위로 유지했다. Phase 2 (31–39 d)는 stress test를 위해 TN 농도를 696 mg-N/L로 증가시키고, HRT를 8.5 h까지 서서히 감소시켰다. HRT의 감소로 인해 NLR은 1.82 kg-N/m3⋅d까지 증가하였으며, Phase 1에 비해 약 4배 이상의 NLR이 AGs와 IP-IAGs에 작용하였다. 이를 통해 stress 환경에서의 anammox 활성에 대한 비교분석을 수행하였다.

2.3 미생물 군집구조 분석

본 연구에서는 철 입자 유무에 따른 anammox 공정의 효율과 군집의 변화 및 특성을 확인하기 위해 AGs, IP-IAGs, RW-PN, RW-IAGs의 샘플을 채취하여 미생물 군집구조를 분석했다. 미생물 샘플링은 각 anammox 공정에서 안정적인 질소 처리 효율이 측정된 시점에서 진행되었다. 미생물 군집구조 분석을 위해 DNA Extraction kit (FastDNA SPIN Kit for soil. MP Biomedicals, USA)와 FastPrep-24 (MP Biomedicals, USA)를 사용하여 샘플의 genomic DNA를 추출하였다. 샘플은 Sodium Phosphate Buffer 978 μL, MT buffer 122 μL와 혼합되었으며, Fastprep 장비를 사용해 6.0 m/s에서 40초간 파쇄된 후, 원심분리를 진행하였다. 그 후 PPS 용액 250 μL을 첨가 및 혼합하여 원심분리를 통해 샘플 내 단백질을 침전시켰다. DNA binding, SPIN filtering, Washing, Air dry 단계를 거쳤으며, 최종적으로 DES Elution buffer를 70 μL를 첨가하여 원심분리를 통해 DNA Extraction을 완료하였다. FastDNA SPIN Kit for soil은 토양환경 외에도 여러 환경에서 미생물, 균류 또는 동식물의 DNA를 분리하기에 적합하다. DNA 샘플은 시퀀싱을 포함한 추가 사용이 있을 때까지 -20 °C에서 보관하였다(Park et al., 2022). 추출된 DNA는 Macrogen Inc. (Republic of Korea)의 Illumina MiSeq platform (Illumina, San Diego, CA, United States)을 사용해 범용적으로 미생물 증폭에 사용되는 341F/805R 영역 primer를 사용하여 16s rRNA의 V3 및 V4 영역 시퀀싱을 진행하였다. Q-score가 30점 이상인 염기의 비율은 82.68–84.32%로, 메타게놈 시퀀싱 품질이 양호한 것으로 나타났다. Paired-end read들은 Fast Length Adjustment of Short Reads (FLASH 1.2.11)를 통해 병합되었으며, 길이가 짧거나 긴 경우에는 필터링 및 트리밍과정을 거쳤다. CD-HIT-DUP 100을 사용해 같은 환경에서 두 차례 클러스터링을 수행하였으며, 2차 클러스터링을 진행하기 전에 모든 키메라 서열을 식별하고 제거하였다. 키메라 서열이 아닌 클러스터의 대표적인 read들은 greedy algorithm을 이용하여 추가 클러스터링을 거쳤으며, 3%의 distance cutoff에서 amplicon sequence variant (ASV)를 형성하였다. 그 후, Quantitative insight into Microbial Ecology (QIIME) 매개 변수를 준수하는 QIIME pipeline을 사용하였으며, Ribosomal Database Project (RDP) database를 사용하여 각 샘플에 대해 문에서 종 수준에 이르는 분류를 수행하였다. 또한, 선별된 염기서열은 National Center for Biotechnology Information (NCBI) 데이터베이스와 비교하여 미생물의 분류학적 정보를 도출했다.

3. Results and Discussion

3.1 철 입자 투입에 의한 anammox 군집 변화

바이오매스 샘플은 각 반응기에서 미생물 활성을 대변하는 질소 제거 속도(nitrogen removal rate, NRR) 값을 가질 때 1 mL씩 분취하여 샘플링되었다. EGSB 배양조의 초기 군집은 phylum 수준에서 Firmicutes (46.68%), Actinobacteria (6.26%), Proteobacteria (10.66%), Planctomycetota (5.11%), Acidobacteria (1.65%)로 구성되었으며, genus 수준에서는Carnobacterium (38.14%), Candidatus Brocadia (5%), Uncultured bacterium (3.49%), Croceifilum (2.58%), Dechloromonas (2.32%)가 관측되었다. AGs는 phase 2의 NLR 증가에 따라 활성 감소가 뚜렷하게 나타났다. 이에 따라 철 입자 함입에 따른 군집구조를 비교하기 위해 AGs는 초기 접종 배양액을 기준으로 분석을 진행하였다. IP-IAGs는 반응기 운영 기간 중 NRR이 1.54 kg-N/m3⋅d로 가장 높았던 39 d의 시료를 분석하였다.

ZVI와 Fe3O4로 이루어진 철 입자의 ZVI는 용존산소를 소비하며 Fe2+와 Fe3+로 산화되고, 이는 anammox 생장에 중요한 요소로 작용한다. 또한, ZVI, Fe2+, Fe3+는 anammox 생장에 중요한 요소이다. ZVI는 산화 과정을 통해 ORP를 감소시켜 anammox 미생물이 선호하는 환경을 조성한다(Yan et al., 2019). Van Niftrik et al. (2008)은 anammox 미생물의 소기관인 anammoxosome이 철 성분을 포함하며, 내부 전자전달계와 관련되어 있다고 보고하였다. 또한, anammoxosome은 에너지 생성뿐만 아니라 철 성분의 저장소 역할을 수행하며 heme 함유 효소의 생성을 지원한다(Gao et al., 2014; van Niftrik. and Jetten, 2012). Strous et al. (2006)Ca. Kuenenia stuttgartiensis에서 철분 저장 단백질로 추정되는 두 가지 bacterioferritins (Bfr) 유전자인 Q1Q5F8과 Q1Q315를 발견하였다. 이 철분 저장 단백질은 anammoxosome 내에서 철을 저장하고 방출하는 역할을 하며, anammox 반응에서 중요한 기능을 담당하는 것으로 알려져 있다(Ferousi et al., 2017). 미생물 군집 분석 결과, Planctomycetota의 상대 비율은 AGs에서 48.27%였으나, IP-IAGs에서는 26.72%로 감소하였다(Fig. 3). 반면, substrate loading rate (SLR)을 1.82 kg-N/m3⋅d까지 증가시킨 결과, AGs는 substrate removal rate (SRR)가 0.0063 kg-N/m3⋅d인 반면, IP-IAGs에서는 SRR이 1.54 kg-N/m3⋅d까지 상승하여 안정적인 anammox 공정이 유지되었다(Fig. 2). Liu and Horn (2012)의 연구에 따르면 유입수 내의 Fe2+와 Fe3+가 각각 1.3 mg/L, 0.4 mg/L보다 낮을 때, 질소 제거 효율이 선형적으로 증가한다고 보고되었다. 또한, Fe2+ 첨가한 다양한 anammox 연구에서도 Planctomycetota가 가장 우점하지는 않았지만, 질소 제거 효율이 향상되는 경향이 확인되었다(Shu et al., 2016). 또한, Dsane et al. (2023)의 연구에 의하면 anammox 미생물과 magnetite가 결합됨에 따라 Planctomycetota의 종 분포는 anammox 특이적으로 수렴하였다. 이와 마찬가지로, IP-IAGs도 Planctomycetota의 우점도는 감소하였지만 anammox 군집의 우점도는 증가하여 질소 제거 효율이 증가한 것으로 추정된다.

Fig. 2. Comparative performance of IP-IAGs and AGs: (a) substrate loading rate (SLR) and substrate removal rate (SRR) of AGs; (b) SLR and SRR of IP-IAGs.
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Fig. 3. Representative phyla of AGs and IP-IAGs.
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더욱 세부적인 분석을 위해 상위 10개의 species에 대한 상대적 우점도를 Table 2 및 Fig. 4에 제시하였다. AGs는 anammox 미생물로 Ca. Brocadia sinica JPN1 (39.26%), Uncultured anaerobic ammonium-oxidizing bacterium (2.13%), Ca. Kuenenia sp. (1.47%)가 관측되었다. AGs는 IP-IAGs와 비교하여 Ca. Brocadia sinica JPN1의 상대적 우점도가 더 높게 나타났으나, IP-IAGs에서는 Ca. Brocadia sinica JPN1 (7.01%)외에도 Uncultured anaerobic ammonium-oxidizing bacterium (6.62%)과 Ca. Jattenia sp. (5.62%)이 확인되었다. IP-IAGs는 AGs보다 anammox 미생물 간 균등도가 더 높은 것으로 나타났다. 군집의 균등도를 나타내는 Pielou’s evenness 지표에서 AGs가 0.57을 보이는 반면, IP-IAGs에서 0.71로 더 높은 균등도를 나타냈다(Table 1). 특히, IP-IAGs에서 Ca. Jettenia의 높은 우점도는 ferrihydrite, Fe3O4, Fe3+ 등을 함유한 기존 anammox 공정에서 Ca. KueneniaCa. Brocadia가 주로 우점하며 Ca. Jettenia의 우점도가 낮았던 결과와는 상반된다(Liu et al., 2021; Wang, Fan et al., 2022; Wang et al., 2021; Xu et al., 2020; Zhang, Cheng et al., 2018; Zhang, Wei et al., 2022). Zhang et al. (2021)은 Fe3+ 투여량을 0 mg/L에서 100 mg/L로 증가시킨 실험에서 Ca. Brocadia의 상대적 우점도가 감소하는 경향을 보고하였다. Wang, Shu et al. (2016)의 연구에서는 Fe3+ 농도가 6.72 mg/L일 때, Ca. Kuenenia의 우점도가 7.70%에서 4.15%로 감소한 반면, Ca. Jettenia의 우점도는 0.24%에서 0.56%로 증가하였다. Ali et al. (2015)Ca. Jettenia가 hydrazin synthase (hzs), hydroxylamine oxidoreductase (hao), nitrite oxidoreductase (nxr)와 같은 heme 효소를 풍부하게 포함하고 있어 세포 내 철 함량이 높다고 보고하였다. 또한, Ca. Jettenia caeniCa. Brocadia sinica의 세포 내 금속 성분을 비교한 결과, Ca. Jettenia caeniCa. Brocadia sinica보다 더 많은 양의 철을 포함하고 있음이 확인되었다. 이를 바탕으로, 철 입자를 함입한 IP-IAGs에서는 풍부한 철 성분으로 인해 Ca. Jettenia의 우점도가 높아진 것으로 판단된다.

Table 1. Each condition’s Shannon index for alpha diversity, Fisher’s alpha for richness, and Pielou’s index for evenness
Shannon index Fisher’s Alpha Pielou’s index
AGs 3.66 88.13 0.57
IP-IAGs 4.66 111.16 0.71
RW-PN 4.03 81.17 0.64
RW-IAGs 4.72 106.34 0.72
Table 2. Relative abundance (%) of the top 10 bacterial genera and species of the AGs and IP-IAGs
Sample Rank Relative abundance (%) Nearest taxon (Similarity) Accession No.
AGs 1 39.26 Candidatus Brocadia sinica JPN1 (100%) KT023579.1
2 10.40 Uncultured Chloroflexi bacterium (95.04%) JF681827.1
3 9.52 Uncultured Denitratisoma sp. (100%) KU000327.1
4 7.03 Uncultured planctomycete (100%) GQ356164.1
5 6.10 Denitratisoma oestradiolicum (100%) KF810120.1
6 4.07 Uncultured Cytophagaceae bacterium (98.57%) KU000132.1
7 2.34 Uncultured bacterium (92.59%) KY693228.1
8 2.13 Uncultured anaerobic ammonium-oxidizing bacterium (98.13%) LC192426.1
9 1.47 Candidatus Kuenenia sp. (97.19%) MK353154.1
10 1.37 Uncultured bacterium (100%) LC091360.1
IP-IAGs 1 7.92 Uncultured planctomycete (100%) GQ356164.1
2 7.01 Candidatus Brocadia sinica JPN1 (100%) KT023579.1
3 6.62 Uncultured anaerobic ammonium-oxidizing bacterium (98.13%) LC192426.1
4 5.62 Candidatus Jettenia sp. (100%) KX022121.1
5 3.65 Uncultured Flavobacteria bacterium (100%) KP717479.1
6 3.23 Uncultured Chloroflexi bacterium (95.04%) JF681827.1
7 2.92 Uncultured beta proteobacterium (99.06%) MK682777.1
8 2.63 Mycobacterium sp. (100%) CP050192.1
9 2.28 Denitratisoma oestradiolicum (100%) KF810114.1
10 2.27 Uncultured Acidobacteria bacterium (100%) JX494116.1
Fig. 4. Representative genera and species of AGs and IP-IAGs.
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3.2 Anammox 군집 공동 자생 미생물 변화

AGs에서 anammox 미생물이 속한 phylum인 Planctomycetota는 48.27%로 높은 우점도를 보였으나, IP-IAGs에서는 Planctomycetota의 우점도는 26.72%로 감소하였다. 반면, Pseudomonadota의 우점도는 AGs에서 18.49%였던 반면, IP-IAGs에서는 22.29%로 우점도가 상승하였다(Fig. 3). 생물막 기반 anammox 공정에서 Pseudomonadota의 높은 우점도는 여러 연구에서 보고된 바 있으며, 철은 Pseudomonas의 생물막 발달과 유지에 핵심적인 역할을 하는 것으로 알려져 있다(Liu et al., 2017; Zhang, Chen et al., 2018). 또한, Pseudomonadota는 anammox 미생물과 공생 관계에서 NO2-를 NO로 환원시키는 효소인 copper-containing nitrite reductase (nirK)와 cytochrome cd1-dependent nitrite reductase (nirS)를 발현하는 것으로 밝혀졌다(Lawson et al., 2017).

Planctomycetota, Pseudomonadota, Chloroflexi, Bacteroidetes는 anammox 공정에서 높은 우점도를 가지는 대표적인 phylum으로 보고되었다(Chen et al., 2020; Zhang, Yang et al., 2018). Actinobacteria는 AGs에서 IP-IAGs로 전환됨에 따라 우점도가 0.85%에서 4.02%로 증가하였다. Actinobacteria는 대표적인 사상성 미생물로 알려져 있으며(Nielsen et al., 2009), 이 문에 속하는 미생물 중 일부는 iron reducing bacteria (FeRB)로 분류된다. 따라서, 철 입자 함입에 따라 FeRB의 증가로 Actinobacteria의 우점도가 상승한 것으로 추정된다(Hao et al., 2024). Chloroflexi는 AGs에서 15.22%로 높은 우점도를 보였으나, IP-IAGs에서는 4.64%로 감소하였다(Fig. 3). 이러한 결과는 Fe2+와 Fe3+를 투입한 다른 anammox 공정 연구에서도 유사한 경향이 관찰된 바 있다(Peng et al., 2022; Wang, Fan et al., 2022). Chloroflexi는 사상성 형태를 통해 anammox 공정에서 생물막 및 그래뉼 형성에 기여하며(Kindaichi et al., 2012; Li et al., 2009), 독립영양균에 의해 생성된 EPS와 soluble microbial products를 분해하여 그래뉼의 구조를 강화한다(Feng and Wu, 2021; Wang et al., 2020; Yang et al., 2018). 또한, Chloroflexi는 질소 처리 공정에서 발생하는 단백질과 다당류(polysaccharide)와 같은 세포 잔해로부터 에너지를 공급받는다고 알려져 있다(Kindaichi et al., 2012; Xia et al., 2007). 따라서, Chloroflexi의 우점도는 간접적으로 사멸 세포의 양을 나타낼 수 있다. 이를 기반으로 AGs에서 사멸 세포의 양이 IP-IAGs보다 많다는 것을 추론할 수 있다(Chen, Wu et al., 2021).

Pseudomonadota는 하수처리장과 토양에서 가장 흔히 발견되는 phylum으로, 질산화 미생물(nitrite-oxidizing bacteria, NOB), 암모늄 산화 미생물(ammonia-oxidizing bacteria, AOB), 탈질 미생물 등을 포함하여 질소 제거 과정에 중요한 역할을 한다(Hao et al., 2022). NO3-를 NO2-로 환원시키는 종속영양균에 의한 부분 탈질은 anammox 반응에 필요한 기질을 제공하여 공정에 긍정적인 영향을 미칠 수 있다. 또한, Pseudomonadota는 anammox 미생물의 중앙 탄소 대사에 중요한 엽산 및 molybdopterin 보조인자와 같은 필수 화합물을 합성하거나 제공할 수 있는 것으로 보고되었다(Zhao et al., 2018). Chloroflexi Pseudomonadota 같은 종속영양 미생물은 Ca. Brocadia에 의해 합성된 비타민 B12를 활용하며, PseudomonadotaBacteroidetes는 N2O를 N2로 환원시키는 nitrous oxide reductase (nosZ)의 유전자를 발현한다고 보고되었다(Lawson et al., 2017). Bacteroidetes는 AGs에서 4.34%의 상대적 우점도를 보였으나, IP-IAGs에서 16.66%로 약 4배 증가한 것으로 확인되었다(Fig. 3). Bacteroidetes는 유기물질을 흡수하고 분해하는 데 효과적이며, 입자에 부착하여 생장하는 특성을 가진다(Fernández-Gómez et al., 2013; Suominen et al., 2021). Bacteroidetes와 같은 종속영양 탈질균은 독립영양균에 의해 형성된 그래뉼 내부의 유기물질을 활용하여 생장한다(Matsumoto et al., 2010). 이러한 anammox 미생물과의 공생은 자생 미생물들의 탈질 반응 활성을 증대시켜 반응기의 질소 제거 성능을 향상시키고, 궁극적으로 질소 순환에 기여할 것으로 판단된다.

탈질 미생물은 anammox 공정에서 기능적으로 필수적인 역할을 하며, anammox 미생물과 함께 질소 제거 공정에 큰 영향을 미친다(Wang et al., 2021). 본 연구에서는 AGs에서 탈질 미생물인 Uncultured Denitratisoma sp.Denitratisoma oestradiolicum이 각각 9.52%와 6.10%의 우점도를 보였으나, IP-IAGs에서는 각각 우점도가 0.45%, 2.28%로 감소하였다. 이와 유사하게, Mu et al. (2023)의 연구에서도 anammox 공정의 활성 증가에 따라 탈질 미생물인 DenitratisomaThiobacillus의 우점도 감소가 확인되었다. 이는 anammox 공정의 안정화 및 효율 증대와 함께 탈질 미생물의 우점도가 감소할 수 있음을 시사한다.

상대적 우점도가 0.1% 이상인 ASV 분석을 통해 식별된 phylum은 AGs에서 7가지였으나, IP-IAGs에서는 13가지로 증가하였다. Alpha 다양성 분석 결과, 값이 클수록 높은 다양성을 나타내는 Shannon index가 AGs에서 3.66, IP-IAGs에서 4.66으로 도출되어, 철 입자 함입 후 미생물 다양성이 증가했음을 확인할 수 있었다(Table 1). 하수 처리 공정에서의 높은 미생물 다양성은 처리 효율뿐만 아니라(Wang, Zheng et al., 2013; Wang, Guo et al., 2013), 공정 안정성에도 긍정적인 영향을 끼친다(Mielczarek et al., 2013). Chen et al. (2020)은 더 뚜렷한 그래뉼이 형성될수록 더 높은 종 풍부도를 가진다고 보고하였다. 따라서 철 함입에 따라 그래뉼 형성 미생물의 증가와 철 입자에 의한 그래뉼 형성으로 생물 다양성이 증가하고 종간의 풍부한 상호작용이 높은 질소 제거 성능을 보여준 것으로 판단된다.

3.3 실폐수 공정의 군집 변화

질소 제거 성능은 하수처리장의 실폐수인 혐기소화 반류수를 대상으로 평가되었다. 실폐수는 0.41 ± 0.02%의 염도, 7.8 ± 0.20의 pH, NH4+와 CaCO3의 몰분율은 1:0.5인 특성을 보였다. 이 폐수에 anammox 반응에 필요한 NO2-를 확보하기 위해 RW-PN 반응기를 anammox 반응기 전단에 설치하였다. RW-PN 반응기의 유입수 NH4+농도는 815.14 ± 30 mg-N/L이었으며, nitrite nitrogen generation rate는 0.48 ± 4.42 kg-N/m3를 보였다. 후단의 RW-IAGs 반응기에는 최종적으로 NH4+와 NO2-이 각각 421.63 ± 30 mg-N/L, 403.81 ± 34.16 mg-N/L가 유입되었다. 실폐수 반응기는 43 d 동안 12 h의 HRT로 운영되었으며, NRR은 1.41 ± 0.09 kg-N/m3⋅d, nitrogen removal efficiency (NRE)는 83.98%를 기록하였다.

담수나 토양에서 발견되는 대부분의 암모늄 산화 미생물은 Pseudomonadota에 속하며, RW-PN에서는 Pseudomonadota가 46.59%로 가장 높은 상대적 우점도를 보였다(Kong et al., 2017; Madigan and Martinko, 2005; Wang et al., 2017). 그 뒤를 Bacteroidota, Uncultured bacterium, Actinobacteria, Verrucomicrobia, Ignavibacteriae 등이 이었다(Fig. 5). 이전의 부분 질산화 공정 연구에서도 유사한 미생물 군집이 높은 우점도를 나타낸 바 있다(Li et al., 2018; Wei et al., 2018; Yuan et al., 2021). Bacteroidota는 부패한 바이오매스에서 생성된 2차 대사산물과 질산화 미생물이 생산한 EPS를 대사하는 것으로 알려져 있다(Yang et al., 2017). Actinobacteria는 다른 미생물보다 더 안정적인 세포 구조와 높은 적응성을 가지며, 이러한 특성은 미생물 생물막 유지에 기여한다(Zhu et al., 2015).

Fig. 5. Representative phyla of RW-PN and RW-IAGs.
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Fig. 6. Representative genera and species of RW-PN and RW-IAGs.
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Fig. 7. PCoA analysis of the AGs, IP-IAGs, RW-PN, and RW-IAGs with 16s gene sequences.
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상위 10개의 종 수준 분석 결과, Nitrosomonas가 가장 높은 우점도를 보였으며(Table 3), 이는 부분 아질산화를 수행하는 대표적인 미생물이다. 적정 CaCO3 농도와 적정 pH에 의해 NOB의 저해와 AOB의 활성이 효과적으로 이루어진 것으로 나타났다. pH 7.5–8.5의 조건은 NOB의 활성을 억제하고 NO2-의 축적에 기여하는 것으로 보고되었으며(Abeling and Seyfried, 1992; Villaverde et al., 1997), 0.1–1.0 mg-N/L의 free ammonia 농도에서도 NOB의 저해 효과가 관찰되었다(Anthonisen et al., 1976). NOB에는 대표적으로 Nitrobacter, Nitrococcus, Nitrospina, Nitrospira의 종이 포함되는데, 반응조에서는 이러한 미생물의 우점도가 낮게 관찰되었다. 이는 성공적인 부분 아질산화가 발생했음을 시사한다.

Table 3. Top 10 relative abundance (%) of the major bacterial species of the RW-PN and RW-IAGs
Sample Rank Relative abundance (%) Nearest taxon (Similarity) Accession No.
RW-PN 1 22.70 Nitrosomonas sp. (96.96%, 98.60%) AJ224410.1
2 7.20 Uncultured bacterium (100%) MN812775.1
3 4.88 Mycobacterium sp. (100%) CP050192.1
4 4.75 Uncultured Saprospiraceae bacterium (94.38%) MG803225.1
5 3.82 Uncultured Flavobacteriia bacterium (96.69%) KP717479.1
6 3.32 Uncultured bacterium (99.76%) FJ710777.1
7 2.77 Ignavibacteriae bacterium (100%) CP053447.1
8 2.36 Ralstonia sp. (98.36%) HQ222281.1
9 1.39 Uncultured Owenweeksia sp. (98.74%) KX599140.1
10 1.31 Uncultured Planctomycetales bacterium (100%) FJ710622.1
RW-IAGs 1 6.75 Candidatus Brocadia sinica JPN1 (100%) KT023579.1
2 5.62 Uncultured Denitratisoma sp. (100%) KU000327.1
3 4.63 Uncultured planctomycete (100%) GQ356164.1
4 4.36 Nitrosomonas sp. (96.96%) AJ224410.1
5 3.11 Candidatus Jettenia sp. (99.77%) KX022121.1
6 3.03 Uncultured bacterium (100%) MN812775.1
7 2.38 uncultured anaerobic ammonium-oxidizing bacterium (98.13%) LC192426.1
8 2.01 Uncultured Saprospiraceae bacterium (94.38%) MG803225.1
9 1.94 Mycobacterium sp. (100%) CP050192.1
10 1.35 Acinetobacter modestus (100%) MK294284.1

RW-IAGs에서는 Pseudomonadota, Planctomycetota, Bacteroidota, Verrucomicrobia, Ignavibacteriae 등이 각각 35.47%, 19.78% 15.84%, 5.29%, 2.77%, 1.51%의 우점도를 나타냈다. 이 중 Planctomycetota는 RW-PN에서 0.87%의 우점도를 보였으나, RW-IAGs에서 19.78%로 높은 증가율을 확인하였다. 또한, 종 수준 분석 결과, Ca. Brocadia sinica, Ca. Jettenia, Uncultured anaerobic ammonium-oxidizing bacterium 등의 다양한 anammox 미생물의 높은 우점도가 관찰되었다. 이는 합성 폐수를 사용한 IP-IAGs에서와 마찬가지로 Ca. BrocadiaCa. Jettenia가 확인되었음을 보여준다. 이러한 결과는 RW-PN에서 RW-IAGs로 전환되면서 성공적인 anammox 공정이 구축되었음을 시사한다. 또한 AGs, IP-IAGs, RW-PN, RW-IAGs에 대한 beta diversity를 PCoA 분석을 통해 진행한 결과, 유입수의 성상이 다름에도 불구하고 IP-IAGs와 RW-IAGs의 유사도가 상당히 높게 나오는 것을 확인하였다. 이를 통해, 철 입자의 함입이 미생물 군집 변화에 큰 영향을 주었음을 확인할 수 있다.

3.4 철 함입 anammox 공정 사례에 관한 미생물 특성과 활용

Anammox 미생물은 1999년 처음 학계에 보고된 이후, 기존의 생물학적 질소 처리 공정을 대체하기 위해 활발한 연구가 진행되고 있다(Strous et al., 1999). Anammox 공정은 폭기와 유기탄소 요구량이 현저히 낮아 기존 질산화-탈질 공정에 비해 경제적이고 환경친화적인 장점을 가진다(Hauck et al., 2016). 이러한 공정의 성공적인 구현을 위해 미생물 군집구조를 이해하는 것은 필수적이며, 이에 대한 연구는 지속적으로 이루어지고 있다(Bhattacharjee et al., 2017; Pereira et al., 2017). Bhattacharjee et al. (2017)은 suspended growth reactor (SGR)와 attached growth packed-bed reactor (AGR)에서 동일 조건으로 anammox 공정을 가동하여, 반응기 종류에 따른 anammox 군집구조의 변화를 연구하였다. 그 결과, Planctomycetota는 SGR보다 AGR에서 높은 우점도를 보였으며, AGR에서는 ChlorobiProteobacteria가 SGR에 비하여 높은 우점도를 나타냈다. 또한, 우점하는 anammox 미생물은 SGR과 AGR에서 각각 Ca. Brocadia sp. 1, Ca. Brocadia sp. 2로 서로 다른 종이 관찰되었다. Ni et al. (2019)의 연구에서는 Conventional EGSB와 Granule circulating EGSB에서 서로 상이한 anammox 미생물 군집구조를 보였다. Conventional EGSB에서는 Ca. Brocadia의 우점도가 10.0%에서 17.1%로 증가한 반면, Ca. Kuenenia는 15.9%에서 12.6%로, Ca. Jettenia는 2.6%에서 관측 불가 수준으로 감소하였다. Granule circulating EGSB에서는 Ca. Kuenenia Ca. Brocadia는 각각 9.0%, 7.1%로 감소하였으며, Ca. Jettenia는 Conventional EGSB와 동일하게 관측되지 않았다. 이러한 차이는 반응기 형상, EGSB의 가동 조건, 또는 상이한 NRR과 같은 요인이 군집구조 변화에 영향을 미쳤을 것으로 판단된다. Upflow anaerobic sludge blanket (UASB)를 통한 anammox 공정은 Table 4와 같이 다른 반응기 구조에 비해 높은 NLR, NRR, 총질소 제거 효율(total nitrogen removal efficiency, TNRE)이 확인되었다. 이러한 연구에서 Ca. JetteniaCa. Kuenenia가 가장 우점하는 anammox 미생물로 확인되었다.

Table 4. Dominant anammox bacterial genera in previous studies.
Reactor type HRT NLR (kg-N/m3⋅d) NRR (kg-N/m3⋅d) TNRE (%) Dominant anammox bacteria Sludge type Reference
Suspended growth reactor 2 d 0.65 ± 0.65 - 88 ± 2 Ca. Brocadia floc (Bhattacharjee et al., 2017)
Attached growth packed-bed reactor 2 d 0.41 ± 0.04 - 86 ± 2 Ca. Brocadia biofilm (Bhattacharjee et al., 2017)
UASB 3 h 1.28 1.13 91.28 Ca. Jettenia granule (Chen et al., 2017)
UASB 2 h 4.23 3.72 - Ca. Kuenenia granule, biofilm (Wang, Chen et al., 2023)
Granule circulating EGSB 8 h 0.72 0.78 75.6 Ca. Kuenenia granule (Ni et al., 2019)
Conventional EGSB 8 h 0.72 0.61 58.9 Ca. Brocadia granule (Ni et al., 2019)
SBR - - 0.99 - Ca. Kuenenia granule and floc (Ni et al., 2019)
Gel bed biofilm CSTR - 0.34 - 67 ± 15 Ca. Kuenenia biofilm (Wu et al., 2018)
Sequencing batch biofilm reactor 48 h - - 80.6 ± 0.6 Ca. Brocadia biofilm (Li et al., 2017)
Membrane bioreactos - 1 1.6 - Ca. Kuenenia biofilm (Meng et al., 2014)

Anammox 미생물에서 질소 제거 효소의 주요 구성 요소인 Fe2+, Fe3+ 및 ZVI 등의 활용은 anammox 공정에서 NRE 증가에 큰 영향을 끼친다(Wang, Ren et al., 2023). NRE를 증가시키기 위해 철을 활용한 anammox 미생물의 기능을 증진시키는 다양한 연구와 전략이 개발되었으며, 대표적으로 Fe2+, Fe3O4, ferrihydrite, maghemite nano particles (MHNPs), ZVI 등이 활용되었다(Table 5).

Table 5. Dominant anammox bacterial genera in previous anammox processes integrated with iron
Iron particle type Reactor type HRT NLR 
(kg-N/m3⋅d)
NRR 
(kg-N/m3⋅d)
Influent or initial N concentration (mg/L) TNRE (%) Dominant anammox bacteria Sludge type Reference
Iron particle CSTR 8.5 h 1.82 1.54 - - Ca. Brocadia granule this study
Fe2+
(0.09mmol/L)
Batch - - - NH4+-N:50
NO2--N:66
85 Ca. Kuenenia granule (Ding et al., 2021)
Fe3O4 UASB 0.9 h 13.9 ± 0.5 12.81 ± 0.5 - - Ca. Kuenenia granule (Xu et al., 2020)
Fe3O4 SBR - 0.33 0.32 < - - Ca. Kuenenia granule (Zhang, Wang et al., 2022)
Ferrihydrite SBR - - 0.72 ± 0.04 - - Ca. Brocadia granule (Wang, Li et al., 2022)
MHNPs UASB 1.2 h 11.2 ≈9.8 - - Ca. Kuenenia granule, floc (Zhang, Cheng et al., 2018)
Nanoscale ZVI UASB 1.2 h - - NH4+-N:280
NO2--N:280
85.7±1.4 Ca. Kuenenia granule (Zhang, Xu et al., 2017)
ZVI UASB 5.4 h 1.93 - NH4+-N:208.48 ± 20.36
NO2--N:212.26 ± 15.94
86.02±1.98 Ca. Brocadia granule (Zhang, Wang et al., 2022)

Heme C는 anammox 성능과 대사를 평가하는 데 적합한 지표로 보고되었다(Kartal et al., 2010; Tang et al., 2011). Xu et al (2020)의 연구에서 Fe3O4의 투여량과 heme C간 유의미한 상관관계가 확인되었으며(p < 0.01), Fe3O4 투여량이 200 mg/L로 최대일 때 specific anammox activity는 Fe3O4를 투여하지 않았을 때에 비해 1.6배 증가하였다. 이 연구에서는 Ca. Kuenenia가 우점종으로 확인되었으며, Fe3O4 최대 투여 시, Ca. Kuenenia의 우점도가 25.1%에서 33.4%로 증가하여 Ca. Kuenenia의 상대적 우점도가 Fe3O4와 높은 상관관계(p < 0.05)를 가진다고 보고하였다. 또한, SBR에 Fe3O4를 투여해 anammox 공정을 가동한 연구에서도 Ca. Kuenenia가 우점종으로 관찰되었으며, 이는 Fe3O4 투여가 Ca. Kuenenia와 높은 상관성을 가질 가능성을 시사한다(Zhang, Wei et al., 2022). MHNPs를 anammox 공정에 투입했을 때 Ca. Kuenenia가 우점하였으며, MHNPs 투여로 인해 응집성이 향상된 것으로 보고되었다(Zhang, Cheng et al., 2018). Zhang, Xu et al. (2017)의 연구에서는 nanoscale ZVI를 활용하여 높은 질소 농도의 유입수를 짧은 HRT 조건에서 처리했으며, 이때 우점 anammox 미생물 또한 Ca. Kuenenia로 확인되었다. 반면, ZVI를 활용한 다른 연구에서는 Ca. Brocadia가 가장 우점하는 종으로 관찰되기도 하였다(Zhang, Wang et al., 2022).

Table 5에 제시된 바와 같이, 대부분의 철 입자가 함입된 anammox 공정에서 우점하는 anammox 미생물은 Ca. Kuenenia 또는 Ca. Brocadia로 관찰되었으며, 모든 공정에서 슬러지가 그래뉼 형태인 특징을 보였다. 본 연구에서도 IP-IAGs에서 anammox 미생물 중 Ca. Brocadia가 가장 높은 우점도를 보였으나, Ca. Jettenia의 우점도가 크게 증가했으며, 철 입자가 함입되지 않은 경우 Ca. Jettenia가 관측되지 않고 Ca. Brocadia가 가장 우점했다. 이러한 결과는 철 입자가 anammox 미생물 군집구조에 주요한 영향을 미쳤음을 시사한다. 또한, 철 입자가 함입된 후 anammox 미생물의 다양성이 증가하였으며, 이는 Ca. Jettenia뿐만 아니라 다른 anammox 미생물도 철 입자의 영향을 받은 것으로 추정된다. Anammox 미생물은 철 이온을 전자 수용체로 사용하는 특성을 가지며(Arumugham and Mohamad, 2022; Kartal et al., 2008), Ca. Kuenenia stuttartiensis는 철을 함유한 단백질인 ferredoxin을 활용하여 N2H4의 고에너지 전자를 acetyl-CoA 합성효소로 전달한다고 밝혀졌다(Strous et al., 2006). 이처럼 anammox 미생물은 철을 활용하는 생리적 특성을 가지고 있으며, 철 함입으로 anammox 미생물에 긍정적인 영향을 끼쳐 우점도가 증가하고 높은 활성을 보인 것으로 사료되며 추가적인 연구가 필요하다.

3.5 Anammox targeting primers

Anammox 미생물은 종에 따라 적응하는 환경이 달라 폐수 성상에 따라 군집 구조 변화가 관찰된다. Ca. Scalindua는 해수에서 관측되는 대표적인 anammox 종으로, 담수 환경에서 우점하는 다른 anammox 종들과 구별된다(Ali et al., 2020; Lin et al., 2021; Sonthiphand et al., 2014). 종의 염분 내성 차이에 따라, 염분 농도에 따라 상이한 anammox 군집이 우점할 가능성을 유추할 수 있다(Okabe et al., 2024). Jeong et al. (2020)의 연구에서는 반응기 내의 염도가 0 mg/L에서 20 mg/L로 증가했을 때, 낮게 관찰되던 Ca. Kuenenia의 우점도가 13.4%까지 증가한 반면, Ca. Brocadia는 크게 감소하였다. 이에 따라 Ca. JetteniaCa. Kuenenia가 염분 환경에서 anammox 반응의 주요 구성 요소로 작용한 것으로 확인되었다. 또한, anammox 미생물은 종에 따라 성장에 적합한 pH가 다른 특성을 가진다. Ca. Brocadia sinica는 7.0–8.5, Ca. Brocadia anammoxidans는 6.7–8.3, Ca. Kuenenia stuttgartiensis는 6.5–9.0의 pH 범위에서 성장 가능한 것으로 보고되었다(Jetten et al., 2005; Oshiki et al., 2011; van Der Star, van de Graaf et al., 2008). 이처럼 폐수 성상에 따라 anammox 미생물 활성이 달라지므로 정량적 분석을 시 특정 종으로 구체적으로 분석하는 것이 중요하다. 정량적 분석에서는 실시간 중합효소 연쇄반응(quantitative polymerase chain reaction, qPCR)이 활용되며, primer와 probe를 설계하여 특정 종의 정량적 평가를 수행할 수 있다. 이를 위해, 기존 연구에서 anammox 미생물의 정량적 분석에 사용된 primer와 probe를 Table 6에 정리하였다.

Table 6. A summary of primer pairs targeting anammox bacteria or functional genes
Primer Sequence (5’–3’) Annealing temperatures Reference
Brod541F GAGCACGTAGGTGGGTTTGT 60 ℃ (Penton et al., 2006)
Brod1260R GGATTCGCTTCACCTCTCGG
An7F GGCATGCAAGTCGAACGAGG 63 ℃
An1388R GCTTGACGGGCGGTGTG
Amx694F GGGGAGAGTGGAACTTCGG 55–65 ℃ (Ni et al., 2010)
Amx960R GCTCGCACAAGCGGTGGAGC
A438f GTCRGGAGTTADGAAATG 56 ℃ (Humbert et al., 2012)
A684r ACCAGAAGTTCCACTCTC
BRSP454F GCAAGGATGTTAATAGCGTTC 60 ℃ (Narita et al., 2017)
BRSP660R TCAAGCCATGCAGTATCGGAT
JEC447F GTAAGGGGGTGAATAGCCCTC 60 ℃ (Zhang, Narita et al., 2017)
JEC629R TCCAGCCCTATAGTATCAACT
JEC512P FAM-CAGCAGCCGCGGTAATACAGA-MGB-NFQ
BRS95F GATGGGAACAACAACGTTCCA 60 ℃
BRS170R TTCTTTGACTGCCGACACCA
BRS130P FAM-CCGAAAGGGTTGCTAATTCTCA-MGB-NFQ
SCJ447F GTAAACAGGTTAATACCCTGT 60 ℃
SCJ629R TCAAGATCTACAGTTTCAGAT
SCJ512P GAM-CAGCAGCCGCGGTAATACAGA-MGB-NFQ
AMX361 AGAATCTTTCGCAATGCCCC-F 55 ℃ (Van der Star et al., 2007)
AMX381 L-AAGGGTGACGAAGCGACGCC
AMX382 L-AAGGTGACGAAGCGACGCC
AMX667R ACCAGAAGTTCCACTCTC
AMX809F GCCGTAAACGATGGGCACT 60 ℃ (Tsushima et al., 2007)
AMX818F ATGGGCACTMRGTAGAGGGGTTT
AMX1066R AACGTCTCACGACACGAGCTG
AMX368F TTCGCAATGCCCGAAAGG 54 ℃ (Wang et al., 2015)
AMX820R AAAACCCCTCTACTTAGTGCCC
Brod541F GAGCACGTAGGTGGGTTTGT 54 ℃
AMX820R AAAACCCCTCTACTTAGTGCCC
hzocl1F1 TGYAAGACYTGYCAYTGG 48 ℃ (Schmid et al., 2008)
hzocl1R2 ACTCCAGATRTGCTGACC
hzoF1 TGTGCATGGTCAATTGAAAG 53 ℃ (Li et al., 2010)
hzoR1 CAACCTCTTCWGCAGGTGCATG
nirKf GTGGATGTTATTAGCAACGTTGC - (Hira et al., 2012)
nirKr ATTTTACGTGCAGTAAACCTCC
hzsA_526F TAYTTTGAAGGDGACTGG 54 ℃ (Harhangi et al., 2012)
hzsA_1857R AAABGGYGAATCATARTGGC

Brod541F/Brod1260R와 An7F/An1388R은 Ca. Scalindua, Ca. Brocadia, Ca. Kuenenia의 16S rRNA를 기반으로 설계되어 광범위한 anammox 미생물의 정량평가에 활용된다. 이 중 Brod541F/Brod1260R primer는 해수종인 Ca. Scalindua에 높은 특이성을 보이며, 특히 Brod541F는 Ca. Scalindua brodae와 100% 상응하는 것으로 밝혀졌다(Penton et al., 2006). Amx694F/Amx960R은 UASB 반응기의 Ca. Kuenenia stuttgartiensis를 기반으로 설계되어, 이에 대해 높은 반응 효율을 나타내며, 전반적인 anammox 미생물의 정량을 목적으로 사용된다(Ni et al., 2010; Yang et al., 2020). A438f/A684r primer 쌍은 습지 토양 샘플에서 anammox 미생물을 정량하기 위해 활용되었다(Humbert et al., 2012). 특정 종을 목적으로 한 primer 설계도 이루어져 Narita et al. (2017)Ca. Brocadia sapporoensis를 대상으로 하는 primer 쌍인 BRSP454F/BRSP660R을 개발하였다. Zhang, Narita et al. (2017)은 qPCR로 각 anammox 미생물 종의 비성장속도 (μ)를 위한 최대비성장속도 (μmax)를 결정하기 위해 설계된 primer BRS95F/BRS170R, JEC447F/JEC629R, SCJ447F/ SCJ629R을 계통발생학적으로 다른 Ca. Brocadia sinica, Ca. Jettenia caeni, Ca. Scalindua sp.에 적용하였다. 70 m3 규모 반응기의 anammox 미생물을 정량하기 위해 Pla46F/AMX667R primer과 전반적인 anammox 미생물에 hybridization되는 AMX361, AMX381와 Ca. Kuenenia, Ca. Brocadia에 hybridization되는 AMX382 probe가 사용되었다(van der Star et al., 2007). Wang et al. (2015)는 AMX368F/AMX820R이 Ca. Brocadia, Ca. Kuenenia에 높은 반응 효율을 보이며, Brod541F/AMX820R은 Ca. Scalindua wagneri에 대해 반응 효율을 가진다고 보고하였다.

Anammox 미생물의 유전체 분석 기술이 발전함에 따라 primer 제조를 위한 다양한 염기서열이 설계되었으며, 이는 functional gene 영역까지 확장되었다. 16S rRNA gene primer와 함께 functional gene primer는 생물 다양성, 풍부도, anammox 미생물 활성에 관한 중요한 정보를 제공한다(Yang et al., 2020). 특히, functional gene의 증폭을 통해 적은 양의 anammox 미생물을 포함하는 샘플에서도 탐지 성능을 향상시킬 수 있다(Kartal, Geerts et al., 2011). Hydrazine oxidoreductase (hzo)의 유전자는 N2H4를 N2로 전환하는 역할의 효소를 생성하며, anammox 미생물의 생화학적 과정에서 핵심적인 역할을 한다(Schalk et al., 2000). Ca. Jettenia를 포함한 다양한 anammox 미생물 군집에서 hzo 유전자가 관찰되었으며(Quan et al., 2008; Shimamura et al., 2007), Schmid et al. (2008)hzo 유전자를 감지하기 위한 여러 가지 primer 쌍을 제안하였다. 이중 hzocl1F1/hzocl1R2 primer가 높은 반응 효율을 보였으며, hzoF1/hzoR1 primer는 인간 활동으로 인해 영향을 받은 해양 생태계에서 anammox 미생물 탐지에 효과적으로 사용되었다(Li et al., 2010). nirK는 NO2-를 NO로 환원하는 효소로 Ca. Jettenia에서 발견된 반면, Ca. Brocadia에서는 발견되지 않는 특징을 지닌다. 이를 기반으로 Ca. Jettenia의 nirK 유전자를 정량을 위해 nirKf/nirKr가 설계되었다(Hira et al., 2012). 또한, hzs 유전자는 다른 genome에서는 발견되지 않는 anammox 미생물의 특이적 유전자로 평가되며, 이를 위한 primer hzsA_ 526F/hzsA_1857R이 설계되었다(Harhangi et al., 2012). hzs는 anammox 미생물에 필수적인 기능성 효소이며, hzsA, hzsB, hzsC 세 가지 구조로 이루어져 있다. Wang et al (2021)hzsB 유전자가 anammox 활성 평가를 위한 유용한 지표로 활용 가능성을 보고하였다. Wang, Ni et al (2016)의 연구에서는 hzohzs를 qPCR을 통해 정량화한 결과, 질소 제거 성능과의 상관관계에서 R2 > 0.96으로 높은 연관성이 관측되었다. 이러한 결과는 특정 anammox 종이나 functional gene에 대한 정량적 분석이 anammox 공정의 이해와 제어에 있어 중요한 도구가 될 수 있음을 시사한다.

4. Conclusion

IP-IAGs의 구현은 NRR을 1.54 kg-N/m³⋅d로 크게 향상시켰으며, 미생물 군집 구조에도 변화를 유발하였다. 철 입자 함입 후 IP-IAGs에서는 Ca. BrocadiaCa. Jettenia가 우점하였으며, 군집의 다양성과 균등도가 AGs보다 증가하였다. 특히, Ca. Jettenia는 철 입자 함입 전에는 관찰되지 않았던 종으로, 철 환경에서의 우점도 상승이 확인되어 이에 대한 추가적인 연구의 필요성을 시사한다. RW-PN 반응기에서는 NOB가 억제되고 AOB인 Nitrosomonas sp.가 우점하여 성공적인 아질산화 공정이 구축되었으며, RW-IAGs에서도 IP-IAGs와 유사하게 Ca. Brocadia sinica JPN1Ca. Jettenia가 주요 우점 종으로 관찰되었다. 자생 미생물 군집 또한 철 입자 함입으로 변화를 보였으며, 이는 철 입자가 anammox 미생물뿐만 아니라 자생 미생물 군집에도 큰 영향을 미쳤음을 보여준다. 이러한 결과는 환경 조건에 따라 anammox 미생물의 우점종이 변화할 수 있음을 시사하며, 특정 anammox 미생물의 정량화를 위한 primer 개발과 적용이 필수적이다. 본 연구는 철 입자 함입 환경에서 anammox 미생물 군집에 대한 이해를 심화시켰으며, 앞으로의 정량 분석 및 공정 최적화를 위한 기반 데이터를 제공한다.

Acknowledgement

이 논문은 과학기술정보통신부의 재원으로 한국연구재단의 지원(No.2021R1C1C1009214)과 환경부 「통합물관리대학원사업」의 지원으로 수행되었음.

References

1 
Abeling U., Seyfried C., 1992, Anaerobic-aerobic treatment of high-strength ammonium wastewater-nitrogen removal via nitrite, Water Science and Technology, Vol. 26, No. 5-6, pp. 1007-1015DOI
2 
Adams M., Xie J., Xie J., Chang Y., Guo M., Chen C., Zhang T. C., 2020, The effect of carrier addition on anammox start-up and microbial community: A review, Reviews in Environmental Science and Bio/Technology, Vol. 19, pp. 355-368DOI
3 
Ali M., Okabe S., 2015, Anammox-based technologies for nitrogen removal: Advances in process start-up and remaining issues, Chemosphere, Vol. 141, pp. 144-153DOI
4 
Ali M., Oshiki M., Awata T., Isobe K., Kimura Z., Yoshikawa H., Hira D., Kindaichi T., Satoh H., Fujii T., 2015, Physiological characterization of anaerobic ammonium oxidizing bacterium ‘C andidatus J ettenia caeni’, Environmental Microbiology, Vol. 17, No. 6, pp. 2172-2189DOI
5 
Ali M., Shaw D. R., Saikaly P. E., 2020, Application of an enrichment culture of the marine anammox bacterium “Ca. Scalindua sp. AMX11” for nitrogen removal under moderate salinity and in the presence of organic carbon, Water Research, Vol. 170, pp. 115345DOI
6 
Anthonisen A. C., Loehr R. C., Prakasam T., Srinath E., 1976, Inhibition of nitrification by ammonia and nitrous acid, Journal Water Pollution Control Federation, Vol. 48, No. 5, pp. 835-852Google Search
7 
Arumugham T., Mohamad S. E., 2022, Anammox bacterium ‘Candidatus Kuenenia stuttgartiensis’: A review, 012061, IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, Vol. 1091, pp. 012061DOI
8 
Bhattacharjee A. S., Wu S., Lawson C. E., Jetten M. S. M., Kapoor V., Domingo J. W. S., McMahon K. D., Noguera D. R., Goel R., 2017, Whole-community metagenomics in two different anammox configurations: Process performance and community structure, Environmental Science & Technology, Vol. 51, No. 8, pp. 4317-4327DOI
9 
Camargo J. A., Alonso Á., 2006, Ecological and toxicological effects of inorganic nitrogen pollution in aquatic ecosystems: A global assessment, Environment International, Vol. 32, No. 6, pp. 831-849DOI
10 
Chen C., Jiang Y., Zou X., Guo M., Liu H., Cui M., Zhang T. C., 2021, Insight into the influence of particle sizes on characteristics and microbial community in the anammox granular sludge, Journal of Water Process Engineering, Vol. 39, pp. 101883DOI
11 
Chen G., Wu W., Xu J., Wang Z., 2021, An anaerobic dynamic membrane bioreactor for enhancing sludge digestion: Impact of solids retention time on digestion efficacy, Bioresource Technology, Vol. 329, pp. 124864DOI
12 
Chen H., Hu H. Y., Chen Q. Q., Shi M. L., Jin R. C., 2016, Successful start-up of the anammox process: Influence of the seeding strategy on performance and granule properties, Bioresource Technology, Vol. 211, pp. 594-602DOI
13 
Chen H., Liu T., Li J., Mao L., Ye J., Han X., Jetten M. S., Guo J., 2020, Larger anammox granules not only harbor higher species diversity but also support more functional diversity, Environmental Science & Technology, Vol. 54, No. 22, pp. 14664-14673DOI
14 
Chen H., Zhang B., Yu C., Zhang Z., Yao J., Jin R., 2021, The effects of magnetite on anammox performance: Phenomena to mechanisms, Bioresource Technology, Vol. 337, pp. 125470DOI
15 
Chen J., Ji Q., Zheng P., Chen T., Wang C., Mahmood Q., 2010, Floatation and control of granular sludge in a high-rate anammox reactor, Water Research, Vol. 44, No. 11, pp. 3321-3328DOI
16 
Chen W., Dai X., Cao D., Hu X., Liu W., Yang D., 2017, Characterization of a microbial community in an anammox process using stored anammox sludge, Water, Vol. 9, No. 11, pp. 829DOI
17 
Dai B., Yang Y., Wang Z., Wang J., Yang L., Cai X., Wang Z., Xia S., 2023, Enhancement and mechanisms of iron-assisted anammox process, Science of The Total Environment, Vol. 858, No. 3, pp. 159931DOI
18 
Dapena‐Mora A., Arrojo B., Campos J. L., Mosquera‐Corral A., Méndez R., 2004, Improvement of the settling properties of anammox sludge in an SBR, Journal of Chemical Technology and Biotechnology, Vol. 79, No. 12, pp. 1417-1420DOI
19 
Ding J., Seow W., Zhou J., Zeng R. J., Gu J., Zhou Y., 2021, Effects of Fe (II) on anammox community activity and physiologic response, Frontiers of Environmental Science & Engineering, Vol. 15, pp. 7DOI
20 
Dsane V. F., Jeon H., Choi Y., Jeong S., Choi Y., 2023, Characterization of magnetite assisted anammox granules based on in-depth analysis of extracellular polymeric substance (EPS), Bioresource Technology, Vol. 369, pp. 128372DOI
21 
Fang J., Lyon D. Y., Wiesner M. R., Dong J., Alvarez P. J., 2007, Effect of a fullerene water suspension on bacterial phospholipids and membrane phase behavior, Environmental Science & Technology, Vol. 41, No. 7, pp. 2636-2642DOI
22 
Feng Z., Wu G., 2021, Start-up of anammox systems with different feeding patterns: system performancemicrobial community and potential microbial interactions, Journal of Water Process Engineering, Vol. 39, pp. 101694DOI
23 
Fernández-Gómez B., Richter M., Schüler M., Pinhassi J., Acinas S. G., González J. M., Pedrós-Alió C., 2013, Ecology of marine Bacteroidetes: A comparative genomics approach, The ISME Journal, Vol. 7, No. 5, pp. 1026-1037DOI
24 
Ferousi C., Lindhoud S., Baymann F., Kartal B., Jetten M. S., Reimann J., 2017, Iron assimilation and utilization in anaerobic ammonium oxidizing bacteria, Current Opinion in Chemical Biology, Vol. 37, pp. 129-136DOI
25 
Gao F., Zhang H., Yang F., Li H., Zhang R., 2014, The effects of zero-valent iron (ZVI) and ferroferric oxide (Fe3O4) on anammox activity and granulation in anaerobic continuously stirred tank reactors (CSTR), Process Biochemistry, Vol. 49, No. 11, pp. 1970-1978DOI
26 
Hao C., Dungait J.A., Wei X., Ge T., Kuzyakov Y., Cui Z., Tian J., Zhang F., 2022, Maize root exudate composition alters rhizosphere bacterial community to control hotspots of hydrolase activity in response to nitrogen supply, Soil Biology and Biochemistry, Vol. 170, pp. 108717DOI
27 
Hao X., Zeng W., Li J., Zhan M., Miao H., Gong Q., 2024, High-efficient nitrogen removal with low demand of Fe source and mechanism analysis driven by Fe (II)/Fe (III) cycle, Chemical Engineering Journal, Vol. 481, pp. 148702DOI
28 
Harhangi H. R., Le Roy M., van Alen T., Hu B. L., Groen J., Kartal B., Tringe S. G., Quan Z. X., Jetten M. S., Op den Camp H. J., 2012, Hydrazine synthasea unique phylomarker with which to study the presence and biodiversity of anammox bacteria, Applied and Environmental Microbiology, Vol. 78, No. 3, pp. 752-758DOI
29 
Hauck M., Maalcke-Luesken F. A., Jetten M. S., Huijbregts M. A., 2016, Removing nitrogen from wastewater with side stream anammox: what are the trade-offs between environmental impacts?, ResourcesConservation and Recycling, Vol. 107, pp. 212-219DOI
30 
Hira D., Toh H., Migita C. T., Okubo H., Nishiyama T., Hattori M., Furukawa K., Fujii T., 2012, Anammox organism KSU-1 expresses a NirK-type copper-containing nitrite reductase instead of a NirS-type with cytochrome cd1, FEBS Letters, Vol. 586, No. 11, pp. 1658-1663DOI
31 
Hu K., Li W., Wang Y., Wang B., Mu H., Ren S., Zeng K., Zhu H., Liang J., Xiao J., 2023, Novel biological nitrogen removal process for the treatment of wastewater with low carbon to nitrogen ratio: A review, Journal of Water Process Engineering, Vol. 53, pp. 103673DOI
32 
Humbert S., Zopfi J., Tarnawski S. E., 2012, Abundance of anammox bacteria in different wetland soils, Environmental Microbiology Reports, Vol. 4, No. 5, pp. 484-490DOI
33 
Ilieva Z., Hamza R. A., Suehring R., 2024, The significance of fluorinated compound chain lengthtreatment technologyand influent composition on per‐and polyfluoroalkyl substances removal in worldwide wastewater treatment plants, Integrated Environmental Assessment and Management, Vol. 20, No. 1, pp. 59-69DOI
34 
Jeong D., Kim W., Lim H., Bae H., 2020, Shift in bacterial community structure in response to salinity in a continuous anaerobic ammonium oxidation (anammox) reactor, International Biodeterioration & Biodegradation, Vol. 147, pp. 104873DOI
35 
Jetten M. S., Cirpus I., Kartal B., van Niftrik L., van de Pas-Schoonen K. T., Sliekers O., Haaijer S., van der Star W., Schmid M., van de Vossenberg J., Schmidt I., Harhangi H., van Loosdrecht M., Gijs Kuenen J., Op den Camp H., Strous M., 2005, 1994-2004: 10 years of research on the anaerobic oxidation of ammonium, Biochemical Society Transactions, Vol. 33, No. 1, pp. 119-123DOI
36 
Kang D., Xu D., Yu T., Feng C., Li Y., Zhang M., Zheng P., 2019, Texture of anammox sludge bed: composition featurevisual characterization and formation mechanism, Water Research, Vol. 154, pp. 180-188DOI
37 
Kartal B., de Almeida N. M., Maalcke W. J., Op den Camp H. J., Jetten M. S., Keltjens J. T., 2013, How to make a living from anaerobic ammonium oxidation, FEMS Microbiology Reviews, Vol. 37, No. 3, pp. 428-461DOI
38 
Kartal B., Geerts W., Jetten M. S., 2011, Cultivationdetectionand ecophysiology of anaerobic ammonium- oxidizing bacteria, Methods in Enzymology, Vol. 486, pp. 89-108DOI
39 
Kartal B., Kuenen J. G., Van Loosdrecht M., 2010, Sewage treatment with anammox, Science, Vol. 328, No. 5979, pp. 702-703DOI
40 
Kartal B., Maalcke W. J., de Almeida N. M., Cirpus I., Gloerich J., Geerts W., Op den Camp H. J., Harhangi H. R., Janssen-Megens E. M., Francoijs K. J., Stunnenberg H. G., Keltjens J. T., Jetten M. S., Strous M., 2011, Molecular mechanism of anaerobic ammonium oxidation, Nature, Vol. 479, No. 7371, pp. 127-130DOI
41 
Kartal B., van Niftrik L., Rattray J., van de Vossenberg J. L., Schmid M. C., Sinninghe Damsté J., Jetten M. S., Strous M., 2008, Candidatus ‘Brocadia fulgida’: an autofluorescent anaerobic ammonium oxidizing bacterium, FEMS Microbiology Ecology, Vol. 63, No. 1, pp. 46-55DOI
42 
Khramenkov S., Kozlov M., Kevbrina M., Dorofeev A., Kazakova E., Grachev V., Kuznetsov B., Polyakov D. Y., Nikolaev Y. A., 2013, A novel bacterium carrying out anaerobic ammonium oxidation in a reactor for biological treatment of the filtrate of wastewater fermented sludge, Microbiology, Vol. 82, No. 5, pp. 628-636DOI
43 
Kindaichi T., Yuri S., Ozaki N., Ohashi A., 2012, Ecophysiological role and function of uncultured Chloroflexi in an anammox reactor, Water Science and Technology, Vol. 66, No. 12, pp. 2556-2561DOI
44 
Kirchman D. L., 2002, The ecology of Cytophaga-Flavobacteria in aquatic environments, FEMS Microbiology Ecology, Vol. 39, No. 2, pp. 91-100DOI
45 
Kong Q., He X., Feng Y., Miao M.-s., Wang Q., Xu F., 2017, Pollutant removal and microorganism evolution of activated sludge under ofloxacin selection pressure, Bioresource Technology, Vol. 241, pp. 849-856DOI
46 
Lawson C. E., Wu S., Bhattacharjee A. S., Hamilton J. J., McMahon K. D., Goel R., Noguera D. R., 2017, Metabolic network analysis reveals microbial community interactions in anammox granules, Nature Communications, Vol. 8, No. 1, pp. 15416DOI
47 
Li J., Ye W., Wei D., Ngo H. H., Guo W., Qiao Y., Xu W., Du B., Wei Q., 2018, System performance and microbial community succession in a partial nitrification biofilm reactor in response to salinity stress, Bioresource Technology, Vol. 270, pp. 512-518DOI
48 
Li K., Fang F., Wang H., Wang C., Chen Y., Guo J., Wang X., Jiang F., 2017, Pathways of N removal and N2O emission from a one-stage autotrophic N removal process under anaerobic conditions, Scientific Reports, Vol. 7, No. 1, pp. 42072DOI
49 
Li M., Hong Y., Klotz M. G., Gu J. D., 2010, A comparison of primer sets for detecting 16S rRNA and hydrazine oxidoreductase genes of anaerobic ammonium-oxidizing bacteria in marine sediments, Applied Microbiology and Biotechnology, Vol. 86, No. 2, pp. 781-790DOI
50 
Li X. R., Du B., Fu H. X., Wang R. F., Shi J. H., Wang Y., Jetten M. S., Quan Z. X., 2009, The bacterial diversity in an anaerobic ammonium-oxidizing (anammox) reactor community, Systematic and Applied Microbiology, Vol. 32, No. 4, pp. 278-289DOI
51 
Li Y., Pan L., Zhu Y., Yu Y., Wang D., Yang G., Yuan X., Liu X., Li H., Zhang J., 2019, How does zero valent iron activating peroxydisulfate improve the dewatering of anaerobically digested sludge?, Water Research, Vol. 163, pp. 114912DOI
52 
Lin L., Pratt S., Crick O., Xia J., Duan H., Ye L., 2021, Salinity effect on freshwater anammox bacteria: Ionic stress and ion composition, Water Research, Vol. 188, pp. 116432DOI
53 
Liu N., Sun Z., Zhang H., Klausen L. H., Moonhee R., Kang S., 2023, Emerging high-ammonia‑nitrogen wastewater remediation by biological treatment and photocatalysis techniques, The Science of The Total Environment, Vol. 875, pp. 162603DOI
54 
Liu Q., Liu B., Li W., Zhao X., Zuo W., Xing D., 2017, Impact of ferrous iron on microbial community of the biofilm in microbial fuel cells, Frontiers in Microbiology, Vol. 8, pp. 920DOI
55 
Liu S., Horn H., 2012, Effects of Fe (II) and Fe (III) on the single-stage deammonification process treating high-strength reject water from sludge dewatering, Bioresource Technology, Vol. 114, pp. 12-19DOI
56 
Liu T., Tian R., Li Q., Wu N., Quan X., 2021, Strengthened attachment of anammox bacteria on iron-based modified carrier and its effects on anammox performance in integrated floating-film activated sludge (IFFAS) process, The Science of The Total Environment, Vol. 787, pp. 147679DOI
57 
Lotti T., Kleerebezem R., Abelleira-Pereira J., Abbas B., Van Loosdrecht M., 2015, Faster through training: The anammox case, Water Research, Vol. 81, pp. 261-268DOI
58 
Madigan M. T., Martinko J., 2005, Brock biology of microorganisms, SciELO Espana
59 
Matsumoto S., Katoku M., Saeki G., Terada A., Aoi Y., Tsuneda S., Picioreanu C., Van Loosdrecht M. C., 2010, Microbial community structure in autotrophic nitrifying granules characterized by experimental and simulation analyses, Environmental Microbiology, Vol. 12, No. 1, pp. 192-206DOI
60 
Meng F., Su G., Hu Y., Lu H., Huang L. N., Chen G. H., 2014, Improving nitrogen removal in an ANAMMOX reactor using a permeable reactive biobarrier, Water Research, Vol. 58, pp. 82-91DOI
61 
Mielczarek A. T., Nguyen H. T. T., Nielsen J. L., Nielsen P. H., 2013, Population dynamics of bacteria involved in enhanced biological phosphorus removal in Danish wastewater treatment plants, Water Research, Vol. 47, No. 4, pp. 1529-1544DOI
62 
Ministry of Environment (ME), 2024, Framework act on environmental policy, [Korean Literature], Ministry of EnvironmentGoogle Search
63 
Mu X., Yang J., Chang G., Yang Y., Li S., Luo J., Li X., 2023, Microbial driving mechanism for nitrogen removal performance of anammox with combined fillers addition: Microbial community dynamicsmetabolic function and network analysis, Biochemical Engineering Journal, Vol. 199, pp. 109047DOI
64 
Narita Y., Zhang L., Kimura Z. I., Ali M., Fujii T., Okabe S., 2017, Enrichment and physiological characterization of an anaerobic ammonium–oxidizing bacterium ‘Candidatus Brocadia sapporoensis’, Systematic and Applied Microbiology, Vol. 40, No. 7, pp. 448-457DOI
65 
Naufal M., Wu J. H., 2024, Chemomixoautotrophy and stress adaptation of anammox bacteria: A review, Water Research, Vol. 257, pp. 121663DOI
66 
Ni B. J., Hu B. L., Fang F., Xie W. M., Kartal B., Liu X. W., Sheng G. P., Jetten M., Zheng P., Yu H. Q., 2010, Microbial and physicochemical characteristics of compact anaerobic ammonium–oxidizing granules in an upflow anaerobic sludge blanket reactor, Applied and Environmental Microbiology, Vol. 76, No. 8, pp. 2652-2656DOI
67 
Ni L., Lin X., Yan H., Wang Y., 2019, A novel anammox granules–circulating expanded granular sludge bed reactor for the efficient circulation and retention of floating anammox granules, Chemosphere, Vol. 235, pp. 316-326DOI
68 
Ni S. Q., Sun N., Yang H., Zhang J., Ngo H. H., 2015, Distribution of extracellular polymeric substances in anammox granules and their important roles during anammox granulation, Biochemical Engineering Journal, Vol. 101, pp. 126-133DOI
69 
Nielsen P. H., Kragelund C., Seviour R. J., Nielsen J. L., 2009, Identity and ecophysiology of filamentous bacteria in activated sludge, FEMS Microbiology Reviews, Vol. 33, No. 6, pp. 969-998DOI
70 
Nikolaev Y.A., Kozlov M., Kevbrina M., Dorofeev A., Pimenov N., Kallistova A.Y., Grachev V., Kazakova E., Zharkov A., Kuznetsov B., 2015, Candidatus “Jettenia moscovienalis” sp. nov.a new species of bacteria carrying out anaerobic ammonium oxidation, Microbiology, Vol. 84, pp. 256-262DOI
71 
Okabe S., Kamizono A., Zhang L., Kawasaki S., Kobayashi K., Oshiki M., 2024, Salinity tolerance and osmoadaptation strategies in four genera of anammox bacteria: BrocadiaJetteniaKueneniaand Scalindua, Environmental Science & Technology, Vol. 58, No. 12, pp. 5357-5371DOI
72 
Oshiki M., Shimokawa M., Fujii N., Satoh H., Okabe S., 2011, Physiological characteristics of the anaerobic ammonium–oxidizing bacterium ‘Candidatus Brocadia sinica’, Microbiology, Vol. 157, No. 6, pp. 1706-1713DOI
73 
Park J., Song M., Cho M., Shin Y. U., Jeong S., Hwang K., Bae H., 2024, Iron particle–integrated anammox granules in baffled reactor: Enhanced settling property and nitrogen removal performance, Bioresource Technology, Vol. 402, pp. 130792DOI
74 
Park S., Cho K., Lee T., Lee E., Bae H., 2022, Improved insights into the adaptation and selection of Nitrosomonas spp. for partial nitritation under saline conditions based on specific oxygen uptake rates and next generation sequencing, Science of The Total Environment, Vol. 822, pp. 153644DOI
75 
Peng M. W., Fu H. M., Yan P., Liu P., Weng X., Fang F., Guo J., Zhou X., Chen Y. P., 2022, Deep insights into the roles of iron in the structure and function of the anammox granular sludge system, ACS Sustainable Chemistry & Engineering, Vol. 10, No. 24, pp. 7896-7906DOI
76 
Penton C. R., Devol A. H., Tiedje J. M., 2006, Molecular evidence for the broad distribution of anaerobic ammonium–oxidizing bacteria in freshwater and marine sediments, Applied and Environmental Microbiology, Vol. 72, No. 10, pp. 6829-6832DOI
77 
Pereira A. D., Cabezas A., Etchebehere C., Chernicharo C. A., de Araújo J. C., 2017, Microbial communities in anammox reactors: A review, Environmental Technology Reviews, Vol. 6, No. 1, pp. 74-93DOI
78 
Qiao S., Bi Z., Zhou J., Cheng Y., Zhang J., 2013, Long term effects of divalent ferrous ion on the activity of anammox biomass, Bioresource Technology, Vol. 142, pp. 490-497DOI
79 
Quan Z. X., Rhee S. K., Zuo J. E., Yang Y., Bae J. W., Park J. R., Lee S. T., Park Y. H., 2008, Diversity of ammonium‐oxidizing bacteria in a granular sludge anaerobic ammonium‐oxidizing (anammox) reactor, Environmental Microbiology, Vol. 10, No. 11, pp. 3130-3139DOI
80 
Schalk J., de Vries S., Kuenen J. G., Jetten M. S., 2000, Involvement of a novel hydroxylamine oxidoreductase in anaerobic ammonium oxidation, Biochemistry, Vol. 39, No. 18, pp. 5405-5412DOI
81 
Schmid M. C., Hooper A. B., Klotz M. G., Woebken D., Lam P., Kuypers M. M., Pommerening‐Roeser A., Op Den Camp H. J., Jetten M. S., 2008, Environmental detection of octahaem cytochrome c hydroxylamine/hydrazine oxidoreductase genes of aerobic and anaerobic ammonium‐oxidizing bacteria, Environmental Microbiology, Vol. 10, No. 11, pp. 3140-3149DOI
82 
Shimamura M., Nishiyama T., Shigetomo H., Toyomoto T., Kawahara Y., Furukawa K., Fujii T., 2007, Isolation of a multiheme protein with features of a hydrazine–oxidizing enzyme from an anaerobic ammonium–oxidizing enrichment culture, Applied and Environmental Microbiology, Vol. 73, No. 4, pp. 1065-1072DOI
83 
Shu D., He Y., Yue H., Yang S., 2016, Effects of Fe (II) on microbial communitiesnitrogen transformation pathways and iron cycling in the anammox process: Kineticsquantitative molecular mechanism and metagenomic analysis, RSC Advances, Vol. 6, No. 72, pp. 68005-68016DOI
84 
Sonthiphand P., Hall M. W., Neufeld J. D., 2014, Biogeography of anaerobic ammonia–oxidizing (anammox) bacteria, Frontiers in Microbiology, Vol. 5, pp. 399DOI
85 
Strous M., Fuerst J. A., Kramer E. H., Logemann S., Muyzer G., Van De Pas–Schoonen K.T., Webb R., Kuenen J. G., Jetten M. S., 1999, Missing lithotroph identified as new planctomycete, Nature, Vol. 400, No. 6743, pp. 446-449DOI
86 
Strous M., Heijnen J., Kuenen J. G., Jetten M. S., 1998, The sequencing batch reactor as a powerful tool for the study of slowly growing anaerobic ammonium–oxidizing microorganisms, Applied Microbiology and Biotechnology, Vol. 50, pp. 589-596DOI
87 
Strous M., Pelletier E., Mangenot S., Rattei T., Lehner A., Taylor M. W., Horn M., Daims H., Bartol–Mavel D., Wincker P., Barbe V., Fonknechten N., Vallenet D., Segurens B., Schenowitz–Truong C., Medigue C., Horn A., Snel B., Dutilh B. E., Op Den Camp H. J. M., Van Der Drift C. D., Cirpus I., van de Pas–Schoonen K. T., Harhangi H. R., Van Niftrik L., Schmid M. C., Keltjens J. T. M., van de Vossenberg J., Kartal B., Meier H., Frishman D. I., Huynen M. A., Mewes H. W., Weissenbach J. S., Jetten M. S. M., Wagner M., Le Paslier D. L., 2006, Deciphering the evolution and metabolism of an anammox bacterium from a community genome, Nature, Vol. 440, No. 7085, pp. 790-794DOI
88 
Su K. Z., Ni B. J., Yu H. Q., 2013, Modeling and optimization of granulation process of activated sludge in sequencing batch reactors, Biotechnology and Bioengineering, Vol. 110, No. 5, pp. 1312-1322DOI
89 
Sui H., Zhang B., Wen Z., Zhang N., Zhang N., Zhang R., Li Z., Xue R., 2024, The positive role of pyrite in anammox performance and granulation, Journal of Water Process Engineering, Vol. 67, pp. 106114DOI
90 
Suominen S., Doorenspleet K., Sinninghe Damsté J. S., Villanueva L., 2021, Microbial community development on model particles in the deep sulfidic waters of the Black Sea, Environmental Microbiology, Vol. 23, No. 6, pp. 2729-2746DOI
91 
Tang C. J., Zheng P., Wang C. H., Mahmood Q., Zhang J. Q., Chen X. G., Zhang L., Chen J. W., 2011, Performance of high–loaded ANAMMOX UASB reactors containing granular sludge, Water Research, Vol. 45, No. 1, pp. 135-144DOI
92 
Trigo C., Campos J., Garrido J., Mendez R., 2006, Start–up of the anammox process in a membrane bioreactor, Journal of Biotechnology, Vol. 126, No. 4, pp. 475-487DOI
93 
Trinh H. P., Lee S. H., Kim N. K., Yoon H., Jeong G., Jung Y. J., Hur M., Lee B. H., Park H. D., 2022, Enrichment of Ca. Jettenia in sequencing batch reactors operated with low nitrogen loading rate and high influent nitrogen concentration, Bioresource Technology, Vol. 352, pp. 127079DOI
94 
Tsushima I., Kindaichi T., Okabe S., 2007, Quantification of anaerobic ammonium–oxidizing bacteria in enrichment cultures by real–time PCR, Water Research, Vol. 41, No. 4, pp. 785-794DOI
95 
van De Graaf A. A., Mulder A., De Bruijn P., Jetten M., Robertson L. A., Kuenen J. G., 1995, Anaerobic oxidation of ammonium is a biologically mediated process, Applied and Environmental Microbiology, Vol. 61, No. 4, pp. 1246-1251DOI
96 
van der Star W. R., Abma W. R., Blommers D., Mulder J. W., Tokutomi T., Strous M., Picioreanu C., van Loosdrecht M. C., 2007, Startup of reactors for anoxic ammonium oxidation: Experiences from the first full–scale anammox reactor in Rotterdam, Water research, Vol. 41, No. 18, pp. 4149-4163DOI
97 
van der Star W. R., Miclea A. I., van Dongen U. G., Muyzer G., Picioreanu C., van Loosdrecht M. C., 2008, The membrane bioreactor: a novel tool to grow anammox bacteria as free cells, Biotechnology and Bioengineering, Vol. 101, No. 2, pp. 286-294DOI
98 
van der Star W. R., van de Graaf M. J., Kartal B., Picioreanu C., Jetten M. S., Van Loosdrecht M. C., 2008, Response of anaerobic ammonium–oxidizing bacteria to hydroxylamine, Applied and Environmental Microbiology, Vol. 74, No. 14, pp. 4417-4426DOI
99 
van Niftrik L., Jetten M. S., 2012, Anaerobic ammonium–oxidizing bacteria: Unique microorganisms with exceptional properties, Microbiology and Molecular Biology Reviews, Vol. 76, No. 3, pp. 585-596DOI
100 
van Niftrik L., Geerts W. J., van Donselaar E. G., Humbel B. M., Yakushevska A., Verkleij A. J., Jetten M. S., Strous M., 2008, Combined structural and chemical analysis of the anammoxosome: A membrane–bounded intracytoplasmic compartment in anammox bacteria, Journal of Structural Biology, Vol. 161, No. 3, pp. 401-410DOI
101 
Villaverde S., Garcia–Encina P., Fdz–Polanco F., 1997, Influence of pH over nitrifying biofilm activity in submerged biofilters, Water Research, Vol. 31, No. 5, pp. 1180-1186DOI
102 
Wang D., Zheng W., Liao D., Li X., Yang Q., Zeng G., 2013, Effect of initial pH control on biological phosphorus removal induced by the aerobic/extended–idle regime, Chemosphere, Vol. 90, No. 8, pp. 2279-2287DOI
103 
Wang H., Chen H., Liu S., Li L., Yang D., Dai X., 2023, Inhibition and recovery of UASB–Anammox process: Performance characteristics and microbial community dynamics in response to substrate concentration and dissolved oxygen exposure, Journal of Water Process Engineering, Vol. 51, pp. 103472DOI
104 
Wang H., Fan Y., Zhou M., Wang W., Li X., Wang Y., 2022, Function of Fe (III)–minerals in the enhancement of anammox performance exploiting integrated network and metagenomics analyses, Water Research, Vol. 210, pp. 117998DOI
105 
Wang H., Peng L., Mao N., Geng J., Ren H., Xu K., 2021, Effects of Fe3+ on microbial communities shiftsfunctional genes expression and nitrogen transformation during the start–up of anammox process, Bioresource Technology, Vol. 320, No. Part A, pp. 124326DOI
106 
Wang S., Hong Y., Wu J., Xu X.-R., Bin L., Pan Y., Guan F., Wen J., 2015, Comparative analysis of two 16S rRNA gene–based PCR primer sets provides insight into the diversity distribution patterns of anammox bacteria in different environments, Applied Microbiology and Biotechnology, Vol. 99, pp. 8163-8176DOI
107 
Wang W., Li D., Li S., Zeng H., Zhang J., 2022, Characteristics and mechanism of hollow anammox granular sludge with different settling properties, Journal of Environmental Chemical Engineering, Vol. 10, No. 2, pp. 107230DOI
108 
Wang W., Wang J., Wang H., Ma J., Wu M., Wang Y., 2020, Anammox granule enlargement by heterogenous granule self–assembly, Water Research, Vol. 187, pp. 116454DOI
109 
Wang X., Shu D., Yue H., 2016, Taxonomical and functional microbial community dynamics in an Anammox–ASBR system under different Fe (III) supplementation, Applied Microbiology and Biotechnology, Vol. 100, pp. 10147-10163DOI
110 
Wang Y., Chen J., Zhou S., Wang X., Chen Y., Lin X., Yan Y., Ma X., Wu M., Han H., 2017, 16S rRNA gene high–throughput sequencing reveals shift in nitrogen conversion related microorganisms in a CANON system in response to salt stress, Chemical Engineering Journal, Vol. 317, pp. 512-521DOI
111 
Wang Y., Guo G., Wang H., Stephenson T., Guo J., Ye L., 2013, Long–term impact of anaerobic reaction time on the performance and granular characteristics of granular denitrifying biological phosphorus removal systems, Water Research, Vol. 47, No. 14, pp. 5326-5337DOI
112 
Wang Y., Ren S., Wang P., Wang B., Hu K., Li J., Wang Y., Li Z., Li S., Li W., 2023, Autotrophic denitrification using Fe (II) as an electron donor: a novel prospective denitrification process, Science of The Total Environment, Vol. 858, pp. 159721DOI
113 
Wang Z. B., Ni S. Q., Zhang J., Zhu T., Ma Y. G., Liu X. L., Kong Q., Miao M. S., 2016, Gene expression and biomarker discovery of anammox bacteria in different reactors, Biochemical Engineering Journal, Vol. 115, pp. 108-114DOI
114 
Wei D., Ngo H.H., Guo W., Xu W., Du B., Wei Q., 2018, Partial nitrification granular sludge reactor as a pretreatment for anaerobic ammonium oxidation (Anammox): Achievementperformance and microbial community, Bioresource Technology, Vol. 269, pp. 25-31DOI
115 
Wett B., 2007, Development and implementation of a robust deammonification process, Water Science and Technology, Vol. 56, No. 7, pp. 81-88DOI
116 
Winkler M. K., Straka L., 2019, New directions in biological nitrogen removal and recovery from wastewater, Current Opinion in Biotechnology, Vol. 57, pp. 50-55DOI
117 
Wu N., Zeng M., Zhu B., Zhang W., Liu H., Yang L., Wang L., 2018, Impacts of different morphologies of anammox bacteria on nitrogen removal performance of a hybrid bioreactor: Suspended sludgebiofilm and gel beads, Chemosphere, Vol. 208, pp. 460-468DOI
118 
Xia Y., Kong Y., Nielsen P. H., 2007, In situ detection of protein–hydrolysing microorganisms in activated sludge, FEMS Microbiology Ecology, Vol. 60, No. 1, pp. 156-165DOI
119 
Xiao K., Chen Y., Jiang X., Yang Q., Seow W.Y., Zhu W., Zhou Y., 2017, Variations in physicalchemical and biological properties in relation to sludge dewaterability under Fe (II)–Oxone conditioning, Water Research, Vol. 109, pp. 13-23DOI
120 
Xie Y., Dong H., Zeng G., Tang L., Jiang Z., Zhang C., Deng J., Zhang L., Zhang Y., 2017, The interactions between nanoscale zero–valent iron and microbes in the subsurface environment: A review, Journal of Hazardous Materials, Vol. 321, pp. 390-407DOI
121 
Xu J. J., Cheng Y. F., Jin R. C., 2020, Long–term effects of Fe3O4 NPs on the granule–based anaerobic ammonium oxidation process: Performancesludge characteristics and microbial community, Journal of Hazardous Materials, Vol. 398, pp. 122965DOI
122 
Yan Y., Wang Y., Wang W., Zhou S., Wang J., Guo J., 2019, Comparison of short–term dosing ferrous ion and nanoscale zero–valent iron for rapid recovery of anammox activity from dissolved oxygen inhibition, Water Research, Vol. 153, pp. 284-294DOI
123 
Yang Y., Chen Z., Wang X., Zheng L., Gu X., 2017, Partial nitrification performance and mechanism of zeolite biological aerated filter for ammonium wastewater treatment, Bioresource Technology, Vol. 241, pp. 473-481DOI
124 
Yang Y., Li M., Li H., Li X. Y., Lin J. G., Denecke M., Gu J. D., 2020, Specific and effective detection of anammox bacteria using PCR primers targeting the 16S rRNA gene and functional genes, Science of The Total Environment, Vol. 734, pp. 139387DOI
125 
Yang Y., Lu Z., Azari M., Kartal B., Du H., Cai M., Herbold C. W., Ding X., Denecke M., Li X., Li M., Gu J. D, 2022, Discovery of a new genus of anaerobic ammonium oxidizing bacteria with a mechanism for oxygen tolerance, Water Research, Vol. 226, pp. 119165DOI
126 
Yang Y., Zhang L., Cheng J., Zhang S., Li X., Peng Y., 2018, Microbial community evolution in partial nitritation/anammox process: From sidestream to mainstream, Bioresource Technology, Vol. 251, pp. 327-333DOI
127 
Yoda M., Nishimura S., 1997, Controlling granular sludge floatation in UASB reactors, Water Science and Technology, Vol. 36, No. 6–7, pp. 165-173DOI
128 
Yu C., Huang X., Chen H., Godfray H. C. J., Wright J. S., Hall J. W., Gong P., Ni S., Qiao S., Huang G., Xiao Y., Zhang J., Feng Z., Ju X., Ciais P., Stenseth N. C., Hessen D. O., Sun Z., Yu L., Cai W., Fu H. H., Huang X. M., Zhang C., Liu H. B., Taylor J., 2019, Managing nitrogen to restore water quality in China, Nature, Vol. 567, No. 7749, pp. 516-520DOI
129 
Yuan Y., Zhou Z., Jiang J., Wang K., Yu S., Qiang J., Ming Q., An Y., Ye J., Wu D., 2021, Partial nitrification performance and microbial community evolution in the membrane bioreactor for saline stream treatment, Bioresource Technology, Vol. 320, pp. 124419DOI
130 
Zhang K., Yang B., Ma Y., Lyu L., Pan Y., Wang Y., Li H., Zhu T., 2018, A novel anammox process combined with vibration technology, Bioresource Technology, Vol. 256, pp. 277-284DOI
131 
Zhang L., Okabe S., 2020, Ecological niche differentiation among anammox bacteria, Water Research, Vol. 171, pp. 115468DOI
132 
Zhang L., Narita Y., Gao L., Ali M., Oshiki M., Okabe S., 2017, Maximum specific growth rate of anammox bacteria revisited, Water Research, Vol. 116, pp. 296-303DOI
133 
Zhang L., Wang Y., Hao S., Dou Q., Lan S., Peng Y., 2022, Anammox–synchronous zero–valent iron oxidation promoting synergistic nitrogen and phosphorus removal from wastewater, Bioresource Technology, Vol. 347, pp. 126365DOI
134 
Zhang S., Zhang L., Yao H., Rong H., Li S., 2021, Responses of anammox process to elevated Fe (III) stress: Reactor performancemicrobial community and functional genes, Journal of Hazardous Materials, Vol. 414, pp. 125051DOI
135 
Zhang X., Chen T., Zhang J., Zhang H., Zheng S., Chen Z., Ma Y., 2018, Performance of the nitrogen removalbioactivity and microbial community responded to elevated norfloxacin antibiotic in an anammox biofilm system, Chemosphere, Vol. 210, pp. 1185-1192DOI
136 
Zhang X., Wei D., Zhang H., He Y., Zhang S., Dai J., Wen X., 2022, Comprehensive analysis of the impacts of iron–based nanoparticles and ions on anammox process, Biochemical Engineering Journal, Vol. 180, pp. 108371DOI
137 
Zhang Z. Z., Cheng Y. F., Bai Y. H., Xu J. J., Shi Z. J., Zhang Q. Q., Jin R. C., 2018, Enhanced effects of maghemite nanoparticles on the flocculent sludge wasted from a high–rate anammox reactor: performancemicrobial community and sludge characteristics, Bioresource Technology, Vol. 250, pp. 265-272DOI
138 
Zhang Z. Z., Xu J. J., Shi Z. J., Bai Y. H., Cheng Y. F., Hu H. Y., Jin R. C., 2017, Unraveling the impact of nanoscale zero–valent iron on the nitrogen removal performance and microbial community of anammox sludge, Bioresource Technology, Vol. 243, pp. 883-892DOI
139 
Zhao Y., Liu S., Jiang B., Feng Y., Zhu T., Tao H., Tang X., Liu S., 2018, Genome–centered metagenomics analysis reveals the symbiotic organisms possessing ability to cross–feed with anammox bacteria in anammox consortia, Environmental Science & Technology, Vol. 52, No. 19, pp. 11285-11296DOI
140 
Zhu Y., Zhang Y., Ren H. Q., Geng J. J., Xu K., Huang H., Ding L. L., 2015, Physicochemical characteristics and microbial community evolution of biofilms during the start–up period in a moving bed biofilm reactor, Bioresource Technology, Vol. 180, pp. 345-351DOI